2021_075

медового запаса пасеки (табл.1). Из данных таблицы можно сделать вывод, что основными медоносами, дающими мед основного взятка на период 2020 года, являлись малина, клевер и липа. А доступный медовый ресурс составил около

1526,1 кг.

Таблица 1

Медовый запас пасеки ООО «Медвежья поляна» в радиусе продуктивного лёта пчел

* медовая продуктивность приводится по К.В. Богомолов

Так же на пасеке «Медвежья поляна» каждый год организуют вывоз пчел на медосбор, тем самым восполняя недостаток корма. В связи с этим каждый год весной и раз в середине лета производят вывозку ульев на ближайшие территории – луга, леса и поля. Благодаря этому получается вдвое повысить сбор нектара пчёлами. Тем самым покрывая все необходимые ресурсы кормовой базы. Дополнительно к

120

этому в весенний период и перед зимовкой пчел подкармливают сахарным сиропом и кормовыми добавками (витаминно-минеральными, белковыми и т.д.).

Целесообразная организация и использование кормовой базы пчеловодства имеет важное значение для развития и повышения медовой продуктивности как всей отрасли пчеловодства, так и каждой отдельно взятой пасеки.

В целях наиболее рационального использования кормовой базы пчеловодства важно определить медосборные условия пасек, рассчитать нектаропродуктивность, площади и сроки цветения важнейших медоносов, наметить кочевки пасек на разновременно цветущие естественные и культурные растения [4,5].

Из всего вышесказанного можно сделать вывод, что ни одна отрасль животноводства не связана так тесно с природными условиями и особенностями кормовой базы, как пчеловодство. Поэтому учет зональных особенностей климата, растительности особенно важен для правильного выбора направления пчеловодства, его специализации и технологии производства продуктов пчеловодства.

Литература

1.Горлов И. Мосолов А Способ получения стимулирующего кормления для пчёл // Журнал пчеловодства. 2011. №10. С. 22-25.

2.Богомолов, К. В. Атлас медоносов пчеловода-практика: [альбом-справочник] / К.В. Богомолов. - Рязань: Приз-Р, 2008. С.175.

3.Козяйчев Ю.В. Тхориков Б.А. Анализ мирового опыта развития отрасли пчеловодства

//Научные ведомости. 2018. Т.2. №45. С. 251-260.

4.Мишуковская Г.С., Гиниятуллин М.Г., Наурзубаева А.И. Продуктивные показатели пчелиных семей // Российский электронный научный журнал. 2018. Т. 3. №29. С.216-277.

5.Саяпова Д.Р., Мустафин А.Д. Уникальность пчёл и их жизнедеятельности // Вестник Башкирского государственного медицинского университета. 2015. № 2 (приложение). С. 363-368.

6.Чугреев М.К., Мосолов А.А. Интенсификация пчеловодства за счет повышения качества кормов // Вестник АПК Верхневолжья. 2011. № 3. С. 39-41.

7.Ярошевич Г.С., Мазина Г.С., Кузьмин А.А. Влияние биологически активных веществ на увеличение продолжительности жизни и физиологическое состояние пчел // Известия Великолукской государственной сельскохозяйственной академии. 2019. № 2. С. 33-40.

УДК 636.087

С.В. Пастухов – аспирант; Л.В. Сычева – научный руководитель, профессор,

ФГБОУ ВО Пермский ГАТУ, г. Пермь, Россия

БИОХИМИЧЕСКИЙ СТАТУС КОРОВ В НАЧАЛЕ ЛАКТАЦИИ ПРИ ВВЕДЕНИИ В РАЦИОН ЭНЕРГЕТИЧЕСКИХ ДОБАВОК

Аннотация. В статье представлены результаты использования в рационах новотельных высокопродуктивных коров энергетических кормовых добавок в рекомендуемых дозах. Установили, что скармливание добавок повысило интенсивность обменных процессов, протекающих в организме лактирующих коров опытных групп, по сравнению с контрольной.

Ключевые слова: энергетические добавки, молочная продуктивность,

кровь.

Введение. Высокопродуктивные коровы испытывают большую потребность в питательных веществах, особенно в начале лактации. Для новотельных коров характерен дисбаланс между потреблением корма и синтезом молока. В пе-

121

риод раздоя происходит значительное увеличение продуктивности, а коровы в это время не могут потреблять необходимое для этой продуктивности количество кормов, способное удовлетворить их потребность в сухом веществе. Молоко синтезируется за счёт запасов жировых тканей и мышечных белков своего организма. Всё это приводит к накоплению в организме коров кетоновых тел, избыточное количество которых приводит к нарушению обмена веществ и возникновению кетоза. Во избежание негативных последствий, связанных с нарушением обмена веществ в организме новотельных коров целесообразно использовать энергетические кормовые добавки [3].

Целью проведенных исследований было изучение биохимических показателей крови лактирующих коров в период раздоя при скармливании энергетических добавок.

Материал и методы исследований. Экспериментальные исследования, направленные на изучение влияния скармливания в составе зерносмеси энергетических кормовых добавок на некоторые показатели обмена веществ в организме дойных коров в первую фазу лактации провели в одном из крупнейших предприятий по производству молока в Кунгурском районе Пермского края. Порода крупного рогатого скота, разводимая в данном предприятии – чёрно-пёстрая. Всего в опыте участвовали 30 голов коров, отобранных по методу аналогичных групп. При отборе животных учитывали продуктивность за предыдущую лактацию, живую массу, происхождение и др. Из них было сформировано три группы: контрольная и две опытных [1].

В течение учётного периода, подопытным животным контрольной и опытных групп скармливали базовый рацион, разработанный в хозяйстве с учётом фазы лактации, суточного удоя, содержания жира в молоке, живой массы, возраста и сбалансированный по основным элементам питания. Различия состояли в том, что дойные коровы I опытной группы дополнительно в составе базового рациона получали энергетическую добавку «Кау Энерджи» в дозе 200 г/гол/сутки, а II опытной – энергетическую добавку «Кетостоп-Эл» в дозе 200 г/гол/сутки. Для контроля обмена веществ проводили забор крови у подопытных животных два в течение опыта. Биохимические показатели крови определяли на биохимическом анализаторе StatFax в лаборатории освоения агрозоотехнологий ФГБОУ ВО Пермский ГАТУ. Статистическая обработка экспериментальных данных проведена по методике Н.А. Плохинского [2].

Результаты исследований и их обсуждение. В течение эксперимента по определению влияния скармливания энергетических кормовых добавок в составе зерносмеси дойным коровам в начале лактации проводили взятие крови для определения биохимических показателей, характеризующих обмен веществ в организме животных. Скармливание испытуемых энергетических добавок в рекомендуемых дозах лактирующим коровам в той или иной степени повлияло на процессы обмена веществ, протекающие в организме (табл.).

Главным показателем углеводного обмена является содержание глюкозы в крови, которая играет основную роль в обеспечении организма энергией и ис-

122

пользуется для синтеза лактозы. В наших исследованиях установлено, что скармливание энергетической добавки «Кетостоп-Эл» привело к достоверному повышению содержания глюкозы в крови животных II опытной группы по сравнению с контролем на – 0,29 ммоль/л (P≤0,05). Однако, необходимо отметить, что содержание глюкозы в крови животных всех групп было на уровне 2,62- 2,91 ммоль/л и соответствовало референтным значениям.

Примечание: *– разность достоверна по отношению к контрольной группе при P≤0,05

Основной показатель, характеризующий белковый обмен – это содержание общего белка в сыворотке крови. Важность определения этого показателя состоит

втом, что он характеризует соответствие количество белка в рационе потребностям животного. Полученные данные говорят о том, что содержание общего белка было также выше в крови животных II опытной группы, по сравнению с аналогами контрольной на 5,63 г/л или на 6,38 % (P≤0,05).

По содержанию мочевины, щелочной фосфатазы, кальция и фосфора, аминотрансфераз (АЛТ и АСТ), а также каротина существенных изменений между группами не выявлено. Однако, следует отметить, что хотя у всех групп они были

впределах физиологической нормы, но наиболее оптимальная концентрация их была в крови животных II опытной группы.

Вывод. Полученные результаты исследований говорят о том, что скармливание энергетических добавок в составе зерносмеси для дойных коров в первую фазу лактации оказывают положительное влияние на обмен веществ, особенно в той группе, животные которой получали добавку «Кетостоп-Эл» в дозе 200 г на голову в сутки.

Литература

1.Антонова В.С., Топурия Г.М., Косилов В.И. Методология научных исследований в животноводстве: учебное пособие. Оренбург: Изд-во центр ОГАУ, 2011. 246 с.

2.Плохинский Н.А. Руководство по биометрии для зоотехников. М. : Колос, 1986. 255 с.

3.Шарвадзе Р.Л., Бабухадия К.Р., Бурмага А.В., Курков Ю.Б. Включение пропиленгликоля в рационы при раздое коров // Дальневосточный аграрный вестник. 2017. № 3 (43). С. 157-162.

123

УДК 619.576.89

Т. П. Плеханова – студентка; И. Г. Гламаздин – научный руководитель, профессор,

ФГБОУ ВО «МГУПП», г. Москва, Россия

ТРАДИЦИОННЫЕ И АЛЬТЕРНАТИВНЫЕ МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ ПАРАЗИТАРНЫХ ЗАБОЛЕВАНИЙ

Аннотация. В ветеринарии существует возрастающая потребность в более быстрых и точных, чем традиционные, методах диагностики паразитарных болезней, которые можно применять в условиях ограниченности ресурсов. За последние годы проводились исследования, направленные на изобретение альтернативных методов диагностики. Данная статья является литературным обзором. Нами был проведен анализ данных доступной нам научной литературы.

Ключевые слова: лабораторные исследования, паразитология, ветеринария, протеомика, ПЦР, ИФА, ELISA, Luminex.

В настоящее время для обнаружения и диагностики паразитарных инфекций используются несколько методов лабораторных исследований, многие из которых не обладают необходимой чувствительностью и специфичностью для определения, например, болезней в латентной, молниеносной фазой, а также для определения ответа на терапию или возможного прогноза болезни.

Недавно разработанные альтернативные методы диагностики открыли новые возможности для значительного повышения точности, специфичности и скорости исследований. Примером являются недавно разработанные высокоспецифичные и высокочувствительные серологические методы диагностики, такие как скрининг-тесты Falcon assay ELISA (FAST-ELISA) [12], Dot-ELISA [18] и система иммунопреципитации люциферазой (LIPS). Помимо серологических тестов также внедрены молекулярные методы диагностики, например, петлевая изотермическая амплификация (LAMP) [3], полимеразная цепная реакция в реальном време-

ни и Luminex.

Долгое время микроскопия являлась единственным доступным методом исследования и диагностики паразитарных заболеваний путём изучения мазков крови, кала, костного мозга, цитологии тканей и лимфоузлов [7], спинномозговой жидкости [9] и т.д. Для подготовки образцов требуется время, а точность диагноза напрямую зависит от квалификации лаборанта. До сих пор многие гельминтозы диагностируются с помощью первичной микроскопии.

Серологические исследования зачастую являются золотым стандартом диагностики. Условно все виды серологических исследований можно разделить на две группы: анализы для выявления антигенов и анализы для выявления антител. К первой группе относятся: твердофазный иммуноферментный анализ (ELISA), также называемый иммуноферментным анализом (ИФА), и все его производные виды, такие как скрининговый тест Falcon Assay ELISA (FAST-ELISA) и dotELISA. Во вторую группу входят тест гемагглютинации (HA), тесты непрямых

124

или прямых иммунофлуоресцентных антител (IFA или DFA), тест связывания комплемента (CF), а также иммуноблоттинг и тесты быстрой диагностики (RDT).

Преимущество этих методов особенно просматривается в случаях, когда с помощью одной микроскопии дифференцировать паразитов весьма затруднительно [1], например, мазок крови для дифференцировки бабезий [6], а также в случаях слабой паразитемии или отсутствия характерных клинических симптомов [10]. Также в случаях фасциолёза [2] серологическая диагностика позволяет выявить хроническую форму заболевания, когда яйцепродукция паразита чрезвычайно низкая или спорадическая.

Dot-ELISA также является серологическим методом диагностики. В dotELISA пластиковая пластина заменяется нитроцеллюлозной мембраной. Замена материала матрицы значительно повысила специфичность и чувствительность метода за счёт уменьшения доли связывания неспецифических белков, которое часто встречается при использовании пластиковых матриц. Принцип проведения исследования заключается в следующем: пунктирную мембрану сначала инкубируют с антиген-специфическим антителом, а затем с фермент-конъюгированным анти-антителом; добавление осаждаемого хромогенного субстрата вызывает образование цветной точки на мембране, которую можно оценить визуально [18]. Преимуществами данного метода исследования являются скорость, простота проведения анализа и его интерпретации, поэтому dot-ELISA широко использовался и до сих пор широко используется для выявления паразитарных заболеваний человека и животных, включая бабезиоз, фасциолез, кожный и висцеральный лейшманиоз, эхинококкоз, малярию, токсокароз, токсоплазмоз и т.д. Не так давно опубликованы так же исследования о применении данного метода диагностики для обнаружения Fasciola gigantica [13], Trypanosoma cruzi [5] и Trypanosoma brucei [9].

Во избежание многих недостатков и неточностей серологические и микроскопические методы диагностики стали дополняться молекулярными методами исследований.

Молекулярные исследования нуклеиновых кислот обладают наибольшими чувствительностью и специфичностью из всех известных методов диагностики паразитарных заболеваний. Они позволяют поставить диагноз с высокой точностью даже пациентам с низкой концентрацией паразитов [14].

ПЦР в реальном времени позволяет количественно определить концентрацию исходного материала [20] с помощью различных флуоресцентных химических методов, таких как зонды Sybergreen, Taqman, флуоресцентный резонансный перенос энергии и праймеры Scorpion [16]. В случае проведения мультиплексного анализа ПЦР в реальном времени метод позволяет осуществить высокоточное и быстрое исследование на присутствие различных ампликонов, проведя при этом лишь одну совокупность реакций в одной закрытой пробирке [11].

К сожалению, методы ПЦР на данный момент недостаточно стандартизированы [17]. Расхождения в результатах ПЦР могут зависеть от аспектов преаналитического этапа, например, выбора праймера и протокола амплификации.

125

Петлевая изотермическая амплификация (LAMP) – это уникальный метод амплификации, дающий возможность дифференцировать участки ДНК, отличающиеся друг от друга лишь единственным нуклеотидом [19]. Ранее данный метод использовался для обнаружения ДНК и РНК-содержащих вирусов, таких как возбудители лихорадки Западного Нила и SARS, и лишь недавно стал использоваться для диагностики некоторых паразитарных заболеваний, таких как паразиты животных Theilera и Babesia [6] и паразиты человека Entamoeba, Trypanosoma [8],

Taenia, Plasmodium и т.д. Также данный анализ возможно использовать для идентификации комаров, являющихся переносчиками Plasmodium и Dirofilaria immitis [4].

Принцип исследования следующий: образец смешивается в праймерами, ДНК-полимеразой и субстратом в микроцентрифужной пробирке. В результате реакции образуется большое количество пирофосфат-ионов, что приводит к образованию белого осадка [15].

Протеомные исследования в перспективе также могут иметь большое клиническое значения, так как белки являются основной составляющей любой биологической ткани. Протеомные методы позволяют идентифицировать белки двумя способами: восходящим и нисходящим. В первом случае белки в биологической жидкости протеолитически расщепляются на небольшие фрагменты, аминокислотный состав которых можно легко проанализировать, и полученные спектры сравнивают со спектрами, выведенными статистически. Второй способ заключается в проведении двумерного гель-электрофореза для идентификации белков и пептидов в биологических жидкостях. Принцип заключается в двухэтапном расщеплении белков, сначала на основе их pH, затем на основе молекулярной массы.

Для анализа белковых молекул существуют также такие методы, как массспектрометрия с лазерной десорбцией и ионизацией с использованием матрицы (MALDI-TOF MS), масс-спектрометрия с лазерной десорбцией и ионизацией на поверхности (SELDI-TOF MS). Для диагностики паразитарных заболеваний в основном используется метод SELDI, который осуществляется за счёт связывания белков образца с химически активными поверхностями, используемыми в процессе реакции. Изначально данный вид диагностики применялся для обнаружения ранних биомаркеров неоплазии, имеющих прогностическое или диагностическое значение, однако не так давно с помощью исследования SELDI были диагностированы инфекционные заболевания. Использование данного вида диагностики в паразитологии – лишь вопрос времени.

Таким образом, все три подхода к диагностике возбудителей паразитарных болезней имеют прочную теоретическую и практическую базу. Главное преимущество этих методов – возможность прижизненной диагностики паразитарных болезней у животных. Обнаружение РНК паразита может быть использовано и в чисто научных целях, например - палеонтологических исследованиях или для уточнения систематики возбудителей в биологии, но также и для решения прак-

126

тических задач - при оценке качества мясного сырья для приготовления готовых пищевых продуктов.

Литература

1.Гламаздин И.Г. Диагностическая эффективность ELISA при цестодозах собак. Ветеринария. 2003. № 12. С. 28.

2.Коробов А.И., Гламаздин И.Г. Разработка диагностической тест-системы на основе ДОТ-ИФА при фасциолезе крупного рогатого скота. Российский паразитологический журнал. 2010. № 3. С. 88-92.

3.Alhassan A, Thekisoe OMM, Yokoyama N, et al. Development of loop-mediated isothermal amplification (LAMP) method for diagnosis of equine piroplasmosis. Veterinary Parasitology. 2007;143(2):155–160.

4.Aonuma H, Yoshimura A, Perera N, et al. Loop-mediated isothermal amplification applied to filarial parasites detection in the mosquito vectors: Dirofilaria immitis as a study model. Parasites and Vectors. 2009;2(1, article 15)

5.Carrasco HJ, Torrellas A, Garcia C, Segovia M, Feliciangeli MD. Risk of Trypanosoma cruzi I (Kinetoplastida: Trypanosomatidae) transmission by Panstrongylus geniculatus (Hemiptera: Reduviidae) in Caracas (Metropolitan District) and neighboring States, Venezuela. International Journal for Parasitology. 2005;35(13):1379–1384.

6.Carter WJ, Yan Z, Cassai ND, Sidhu GS. Detection of extracellular forms of babesia in the blood by electron microscopy: a diagnostic method for differentiation from Plasmodium falciparum. Ultrastructural Pathology. 2003;27(4):211–216.

7.Chappuis F, Rijal S, Soto A, Menten J, Boelaert M. A meta-analysis of the diagnostic performance of the direct agglutination test and rK39 dipstick for visceral leishmaniasis. British Medical Journal. 2006;333(7571):723–726.

8.Courtioux B, Bisser S, M'Belesso P, et al. Dot enzyme-linked immunosorbent assay for more reliable staging of patients with human African trypanosomiasis. Journal of Clinical Microbiology. 2005;43(9):4789–4795.

9.Croft AM, Jackson CJ, Friend HM, Minton EJ. African trypanosomiasis in a British soldier. Journal of the Royal Army Medical Corps. 2006;152(3):156–160.

10.Diez M, Favaloro L, Bertolotti A, et al. Usefulness of PCR strategies for early diagnosis of Chagas' disease reactivation and treatment follow-up in heart transplantation. American Journal of Transplantation. 2007;7(6):1633–1640.

11.Gasser RB. Molecular tools—advances, opportunities and prospects. Veterinary Parasitology. 2006;136(2):69–89.

12.Hillyer GV, de Galanes MS, Rodriguez-Perez J, et al. Use of the FalconTM assay screening test-enzyme-linked immunosorbent assay (FAST-ELISA) and the enzyme-linked immunoelectrotransfer blot (EITB) to determine the prevalence of human fascioliasis in the Bolivian Altiplano. The American Journal of Tropical Medicine and Hygiene. 1992;46(5):603–609.

13.Kumar N, Ghosh S, Gupta SC. Early detection of Fasciola gigantica infection in buffaloes by enzyme-linked immunosorbent assay and dot enzyme-linked immunosorbent assay. Parasitology Research. 2008;103(1):141–150.

14.Mens P, Spieker N, Omar S, Heijnen M, Schallig H, Kager PA. Is molecular biology the best alternative for diagnosis of malaria to microscopy? A comparison between microscopy, antigen detection and molecular tests in rural Kenya and urban Tanzania. Tropical Medicine and International Health. 2007;12(2):238–244.

15.Mori Y, Nagamine K, Tomita N, Notomi T. Detection of loop-mediated isothermal amplification reaction by turbidity derived from magnesium pyrophosphate formation. Biochemical and Biophysical Research Communications. 2001;289(1):150–154.

16.Muldrew KL. Molecular diagnostics of infectious diseases. Current Opinion in Pediatrics. 2009;21(1):102–111.

17.Murray TS, Cappello M. The molecular diagnosis of parasitic diseases. Pediatric Infectious Disease Journal. 2008;27(2):163–164.

18.Pappas MG. Recent applications of the Dot-ELISA in immunoparasitology. Veterinary Parasitology. 1988;29(2-3):105–129.

19.Parida MM, Sannarangaiah S, Dash PK, Rao PVL, Morita K. Loop mediated isothermal amplification (LAMP): a new generation of innovative gene amplification technique; perspectives in clinical diagnosis of infectious diseases. Reviews in Medical Virology. 2008;18(6):407–421.

20.Poon LLM, Wong BWY, Chan KH, et al. Evaluation of real-time reverse transcriptase PCR and real-time loop-mediated amplification assays for severe acute respiratory syndrome coronavirus detection. Journal of Clinical Microbiology. 2005;43(7):3457–3459.

127

УДК 619:618.14-002:636.7

М.П. Понятов – студент; Д.Ф. Ибишов – научный руководитель, профессор,

ФГБОУ ВО Пермский ГАТУ, г. Пермь, Россия

ЛЕЧЕНИЕ ЭНДОМЕТРИТА У СОБАК

Аннотация. В статье описываются болезни репродуктивной системы собак, а именно эндометриты. В публикации затрагиваются проблемы лечения эндометритов у данного вида животных, представлена схема лечения острого гнойнокатарального эндометрита и её эффективность.

Ключевые слова: собака, эндометрит, пиометра, консервативное лечение, овариогистерэктомия.

Введение. Собаки – самый распространенный вид животных на Земле. В связи с чем, широко распространено содержание собак в племенных целях для разведения.

Большой спрос на собак побуждает заводчиков все больше их разводить. Размножение – основополагающая функция любого живого организма, обеспечивающая преемственность поколений, поддерживающая генетическое и видовое разнообразие. Акушерско-гинекологические болезни животных, в частности самок, являются одной из причин нарушения репродуктивной функции, что приводит к развитию бесплодия. Стоит отметить, что болезни репродуктивной системы у мелких домашних животных в различных регионах России составляют 12-20% от общего числа заболеваний. Из-за высокого уровня встречаемости данной патологии владельцы животных, особенно ценных в племенном отношении несут большие экономические потери [2]. Одним из наиболее часто встречающихся гинекологических заболеваний собак является воспаление слизистой оболочки матки – эндометрит. Эндометритом болеют собаки любой породы, но чаще чихуахуа, той-терьер, японский хин, пекинес, мопс, лабрадор, ретриверы.

Эндометрит возникает в результате травмирования эндометрия и внедрения различных микроорганизмов через родовые пути к матке при патологических родах, задержании последа, субинволюции матки. Нередко воспаление матки возникает как осложнение гнойного вагинита. Предрасполагающими факторами являются снижение общей резистентности организма, неполноценное кормление, отсутствие моциона в период беременности, антисанитарные условия содержания, применение препаратов, блокирующих половое возбуждение [1].

По характеру воспаления эндометриты различают: катаральные, гнойнокатаральные, гнойные, фибринозные, некротические и гангренозные эндометриты. По течению: острые, подострые и хронические [3].

При полноценном лечении эндометрита возможно восстановление функции органа, а при неполноценном лечении процесс переходит в хронический. Обычно эндометриты приводят собак к стерильности и бесплодию, на почве токсемии и септицемии могут развиться хронический эндометрит, маточный абсцесс,

128

миометрит, периметрит, параметрит и пиометра, которые часто заканчиваются гибелью животного.

Наиболее признанным в практике лечения эндометритов собак считается хирургический подход. В научной литературе, наряду с овариогистерэктомией, описана методика медикаментозного лечения с использованием простагландинов [4]. До сих пор не разработан более эффективный метод медикаментозного лечения собак при эндометрите с частичным или полным сохранением их репродуктивной функции. Поэтому целью исследования было определить эффективность и экономическое значение консервативного лечения острого гнойно-катарального эндометрита у собак.

Материалы и методы исследований. Опытными животными были 10

племенных собак возрастом от 4 до 6 лет, массой тела от 20 до 35 кг, которые проходили лечение в ветеринарной клинике с диагнозом гнойно-катаральный эндометрит.

Сбор анамнестических данных, клинический осмотр проводились по общепринятой методике. Для выявления общего состояния животного проводились гематологические исследования. Отбор проб материала из влагалища собак проводили согласно общепринятой методике с окраской по Романовскому-Гимзе. Диагноз обязательно уточняли с помощью ультразвуковой диагностики.

Собакам назначали консервативное лечение: гормональный препарат (антагонист прогестерона) ализин (0,33 мл/кг) в 1,2,8,15 и 22 день; подкожно синтетический аналог простагландина F2a (клопростенол) – эстрофан (1 мкг/кг) на 3,4,5,6 и 7 день от начала лечения; антибиотик широкого спектра действия синулокс внутрь по 12,5 мг на 1 кг веса 2 раза в день – 2 недели; инфузионно раствор йоностерила в дозе 50 мл/кг в течение пяти дней для снятия интоксикации.

На 1,5 и 14 день лечения проводили общий анализ крови. Контроль лечения по УЗИ на 5 и 10 день лечения, также анализ на прогестерон на 14,28 и 54 день лечения.

Результаты исследований. Все животные содержались в городских квартирах. Тип кормления – разнообразный.

По результатам клинического осмотра у всех животных выявляли полиурию, полидипсию, вялость. Волосяной покров взъерошенный, тусклый, в области наружных половых органов и хвоста мокрый, испачкан слизистым содержимым. Гнойные истечения из влагалища разной степени выраженности, у одних собак обильные выделения с резко неприятным запахом, у других выделения не обильные практически без запаха.

По результатам гематологического исследования на первый день у всех собак отмечали выраженный лейкоцитоз со сдвигом ядра влево (24,1±2,31 тыс/мкл), что характерно для воспалительного процесса в организме. На пятый день отмечалось снижение лейкоцитоза (20,2±1,78 тыс/мкл), а на 15 день показатели крови были у пределах референтного интервала (17,6±1,81тыс/мкл).

129