2021_075

УДК 636.082

Л.П. Филиппова – магистрант; Е.Ю. Немцева – научный руководитель, доцент,

ФГБОУ ВО Чувашский ГАУ, г. Чебоксары, Россия

ВОСПРОИЗВОДИТЕЛЬНАЯ СПОСОБНОСТЬ БЫКОВ-ПРОИЗВОДИТЕЛЕЙ

Краткая аннотация. В статье рассматриваются вопросы оценки быковпроизводителей по воспроизводительной способности. Были изучены показатели качества спермопродукции быков-производителей в количестве 10 голов, содержащихся в ОАО «Чувашское» по племенной работе.

Ключевые слова: быки-производители, спермопродукция, эякулят, половая активность.

При совершенствовании племенного стада крупного рогатого скота особые требования предъявляются к быкам-производителям [1, 2, 3, 4, 5, 9]. С начала племенного использования быков-производителей нужно обязательно оценивать их по спермопродукции и половой активности [6, 7, 8].

Цель работы – провести сравнительный анализ показателей спермопродукции быков-производителей, разводимых в племенном предприятии ОАО «Чувашское» по племенной работе.

Исследования проведены в условиях племпредприятии АО «Чувашское» по племенной работе Чебоксарского района Чувашской Республики. На данном предприятии содержится 23 быка-производителя, из них 21 гола относятся к чер- но-пестрой голштинской породе и 2 быка – айрширской породы. Все быкипроизводители обладают разнообразной генетической базой наследуемых селекционных хозяйственно-полезных признаков.

Нами были изучены показатели качества спермопродукции некоторых быков-производителей. Показатели представлены в таблице.

На основании результатов исследования установлено, что у всех быковпроизводителей качество спермы соответствует оптимальным показателям. Предприятие обеспечивает высококачественной биопродукцией более 300 племенных и товарных сельскохозяйственных предприятий республики и соседних регионов. Также биопродукция племпредприятия используется для осеменения коров и телок в крестьян- ско-фермерских хозяйствах и личных подсобных хозяйствах. Условия содержания бы- ков-производителей АО «Чувашское» по племенной работе в полной мере позволяет получать от них спермопродукцию с высокими показателями активности и концентрации, что в дальнейшем влияет на их оплодотворяющую способность.

Литература

1.Евдокимов Н.В., Немцева Е.Ю. Трансплантации эмбрионов для реализации генетического потенциала продуктивности коров и быков в условиях Чувашской Республики // Ветеринарный врач. 2019. № 4. С. 40-44.

2.Игнатьева Н.Л., Немцева Е.Ю. Использование быков голштинской породы разной селекции для улучшения продуктивных качеств молочного скота черно-пестрой породы // Состояние, проблемы и перспективы развития аграрной науки на современном этапе: материалы Всероссийской науч.-прак. конференции. – Чебоксары, Чувашский ГАУ, 2020. С. 39-47.

3.Немцева Е.Ю., Лаврентьев А.Ю. Использование иммуногенетического анализа в целях повышения молочной продуктивности коров // Вестник Чувашской государственной сельскохозяйственной академии. 2019. № 4(11). С. 97-101.

4.Немцева Е.Ю., Лукина А.Ю. Анализ селекционно-племенной работы с крупным рогатым скотом // Развитие аграрной науки как важнейшее условие эффективного функционирования агропромышленного комплекса страны: материалы Всероссийской науч.-прак. конференции. – Чебоксары: Чувашская ГСХА, 2018. С. 265 – 268.

5.Немцева Е.Ю., Евдокимов Н.В. Использование метода трансплантации зигот в условиях Чувашской Республики // Ветеринария сельскохозяйственных животных. 2018. № 8. С. 51 – 54.

6.Немцева Е.Ю., Сергеева Н.В. Оценка быков-производителей по происхождению, качеству потомства и спермопродукции // Развитие аграрной науки как важнейшее условие эффективного функционирования агропромышленного комплекса страны: материалы Всероссийской науч.-практ. конференции. – Чебоксары: Чувашская ГСХА, 2018. С. 268 - 272.

7.Немцева Е.Ю., Евдокимов Н.В. Эффективность оценки быков-производителей по происхождению и качеству потомства // Приоритетные направления инновационного развития сельского хозяйства: материалы Всероссийской науч.-прак. конференции. – Нальчик: КабардиноБалкарский ГАУ, 2020. С. 207-220.

8.Немцева Е.Ю., Петров Н.С. Оценка быков-производителей по качеству потомства // Аграрная наука – сельскому хозяйству: материалы XV Международной нач.-прак. конференции. – Барнаул: Алтайский ГАУ, 2020. С. 202-203.

9.Филиппова Л.П., Немцева Е.Ю. Иммуногенетические исследования в животноводстве

//Современные достижения ветеринарной и зоотехнической науки перспективы развития: материалы Всероссийской науч.-прак. конференции. – Чебоксары: Чувашская ГСХА, 2019. С. 240-244.

УДК 636.4.083

А.В. Хайновский – аспирант; Л.В. Сычева – научный руководитель, профессор,

ФГБОУ ВО Пермский ГАТУ, г. Пермь, Россия

ИНТЕНСИВНОСТЬ РОСТА МОЛОДНЯКА СВИНЕЙ ПРИ ПОТРЕБЛЕНИИ ПРЕМИКСА

Аннотация. Приведены и проанализированы данные по скармливанию ви- таминно-минерального премикса в составе комбикорма для свиноматок и определено положительное влияние на живую массу поросят в возрасте 21 и 35 дней, а также на среднесуточный прирост живой массы и сохранность.

161

Ключевые слова: премиксы, рост, абсолютный и среднесуточный при-

рост.

Введение. В настоящее время доля свинины занимает ведущее место в мясном балансе не только России, но и зарубежных стран. Это связано, прежде всего, с тем, что свиньи это быстрорастущие животные, которые за короткий промежуток времени способны давать больше продукции по сравнению с крупным рогатым скотом при меньших затратах кормов. Для более полной реализации генетического потенциала в свиноводстве необходимо совершенствовать существующие технологии кормления всех технологических групп. Контролировать полноценность кормления необходимо не только по основным питательным веществам, но и по биологически активным, таким как витамины, микроэлементы и аминокислоты, учитывая особенности переваривания кормов в пищеварительном тракте. Самым важным моментом технологии производства свинины в условиях промышленного производства является выращивание поросят, особенно в период подсоса и доращивания. В этот период основную роль играют свиноматки, от которых зависит сохранность, пост и развитие поросят, а также состояние самой свиноматки. Свиноматки должны быть хорошо подготовлены к опоросу за счёт балансирования рационов по биологически активным веществам [3].

Целью проведенных исследований было изучение влияния скармливания премиксов в составе комбикормов на рост молодняка свиней.

Материал и методы исследований. Исследования проведены в условиях АО «Пермский свинокомплекс» Пермского края. Для этого отобрали 24 головы супоросных свиноматок (за пять дней до предполагаемого опороса). Из них сформировали три группы (две опытных и одна контрольная) по восемь голов в каждой. Свиноматок отбирали с учётом живой массы, происхождения, возраста, количества опоросов. Все отобранные животные на протяжении всего эксперимента находились в одинаковых условиях, которые соответствовали принятой на комплексе технологии [1].

Подопытные свиноматки контрольной группы на протяжении учётного периода получали полнорационный комбикорм СК-2, аналогам 1 опытной группы вводили в состав комбикорма витаминно-минеральный премикс «МегаМикс» в количестве 12,5 кг на одну тонну комбикорма, а 2 опытной группы – 25 кг на т комбикорма согласно рекомендации производителя. Испытуемый премикс российского производства. В ходе эксперимента провели оценку репродуктивных качеств свиноматок по следующим показателям: многоплодию, молочности, крупноплодности.

При оценке роста поросят-сосунов учитывали живую массу при рождении, в 21 день и при отъёме в возрасте 35 дней путём индивидуального взвешивания. На основании весовых показателей рассчитали абсолютный и среднесуточный приросты живой массы поросят. Сохранность определяли путём деления количества поросят к отъёму на количество рождённых и выражали в процентах. Стати-

162

стическая обработка экспериментальных данных проведена по методике Н.А. Плохинского с помощью стандартного пакета компьютерных программ [2].

Результаты исследований и их обсуждение. Анализируя полученные ре-

зультаты исследований следует отметить, что по многоплодию существенной разницы между группами не выявлено, оно было на уровне 11,1- 11,4 головы на опорос. Масса гнезда в день опороса составляла 16,6-17,1 кг, а крупноплодность была на уровне 1,46-1,51 кг (табл.). Существенной разницы по этим показателям также не установлено.

Однако, при оценке молочности свиноматок, установлено достоверное повышение этого показателя у свиноматок 2 опытной группы, которым скармливали витаминно-минеральный премикс в количестве 25 кг/т комбикорма по сравнению с аналогами контрольной группы, которые потребляли полнорационный комби-

корм СК-3 на 6,92 кг или 9,73 % (P≤0,05) (табл.).

Примечание: *– разность достоверна по отношению к контрольной группе при P≤0,05

Оценивая ростовые показатели поросят-сосунов установили, что при незначительной разнице по живой массе при рождении в возрасте 21 день живая масса одной головы животных 2 опытной была достоверно выше по сравнению с контролем на 0,74 кг (P≤0,05). Живая масса поросят при отъеме в возрасте 35 дней во 2 опытной группе составляла 10,5 кг, что достоверно больше на 7,62 % по сравнению с аналогами контрольной группы (P≤0,05). Среднесуточный прирост живой поросят, полученных от свиноматок, потреблявших витаминноминеральный премикс, был достоверно выше на 10,21 % (P≤0,05) в сравнении с контролем.

Необходимо также отметить, что наивысшая сохранность поросят к отъёму отмечена во 2 опытной группе и составила 97,8 %, а наименьшая в контрольной группе и составила 92.3 %. Разница между группами составила 5,5 %.

Следовательно, проведенные исследования подтвердили целесообразность скармливания витаминно-минерального премикса.

163

Вывод. Таким образом, включение в состав комбикорма для свиноматок витаминно-минерального премикса положительно отразилось на среднесуточном приросте живой массы и сохранности поросят-сосунов.

Литература

1.Антонова В.С., Топурия Г.М., Косилов В.И. Методология научных исследований в животноводстве: учебное пособие. Оренбург: Изд-во центр ОГАУ, 2011. 246 с.

2.Плохинский Н.А. Руководство по биометрии для зоотехников. М. : Колос, 1986. 255 с.

3.Сычева Л.В. Заменитель цельного молока «Порсимилк» в кормлении поросят

//Достижения науки и техники в АПК. 2013. № 4. С. 58-59.

УДК 579.672

В.С. Цветкова – аспирант; С.Н. Семёнов – научный руководитель, доцент,

ФГБОУ ВО Воронежский ГАУ, г. Воронеж, Россия

МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ ИССЛЕДОВАНИЯ МЫШЕЧНОЙ ТКАНИ РЫБЫ ИЗ ПРИРОДНЫХ ВОДОЕМОВ ПМР

Аннотация. Контроль безопасности мяса рыбы и определение в нем патологических микроорганизмов. Исследованию подвергли рыбу из Кучурганского водохранилища и реки Днестр.

Ключевые слова: бактериоскопия, мясо рыбы, микроорганизмы, бактерии группы кишечной палочки, золотистый стафилококк, бактерии рода Salmonella.

Рыба является незаменимым компонентом питания человека, характеризуется высокой пищевой ценностью. Туловищные мышцы рыб вместе с заключенной в них соединительной и жировой тканью, кровеносными и лимфатическими сосудами и мелкими межмышечными косточками называют мясом рыб [1, 2, 5, 8].

Мясо рыбы может быть заражено патологической микрофлорой, которая опасна для человека [9].

На территории Приднестровской Молдавской Республики установлено большое разнообразии видов рыб, их цифры колеблются от 46 до 130 видов [3,

10].

На базе Республиканской ветеринарной лаборатории провели бактериологические исследования пресноводной рыбы (красноперки и окуня) из Кучурганского водохранилища и реки Днестр.

Бактериоскопия рыбы. Из поверхностных и глубоких слоев ры6ы готовят мазки-отпечатки и красят по Грамму. Окрашенные мазки исследуют под микроскопом и определяют среднее количество микроорганизмов в одном поле зрения. В мазках из свежей рыбы микроорганизмы отсутствуют или имеются единичные экземпляры. В мазках из рыбы сомнительной свежести обнаруживают 10-20 микроорганизмов. В мазках недоброкачественной рыбы находят 30-40 и более различных форм микроорганизмов в поле зрения.

В исследуемых образцах рыбы микроорганизмов мазках-отпечатках выявлено не было.

164

Бактериологическое исследование рыбы проводили, основываясь на СанПинМЗиСЗ ПМР 2.3.2.1078-09 [7].

Метод определения количества мезофильных аэробных и факультативноанаэробных микроорганизмов основан на высеве определённого количества гомогената мяса рыб или его разведений на мясо-пептонный агар (МПА) в чашки Петри с последующим термостатированием в аэробных условиях при температуре 30±1°С в течение 72±3 ч. После термостатирования посевов обрабатывали результаты.

КМАФАнМ в 1 г продукта вычисляли умножением средней арифметической величины числа колоний во всех посевах одного разведения навески на величину этого разведения и делением полученного числа на количество посевного материала (объём, массу).

Определение бактерий группы кишечных палочек (БГКП) (колиформных бактерий). Метод выявления БГКП основан на высеве определенного количества продукта или его разведений (1; 0,01; 0,001 г) в жидкие лактозосодержащие среды с поплавком и инкубировании посевов при температуре 37°С в течение 48 ч. Подтверждение принадлежности выросших микроорганизмов к БГКП определяли по сбраживанию лактозы с образованием кислоты и газа и морфологическим признакам [6, 8].

Для определения БГКП требуемое количество продукта (1; 0,01; 0,001 г) вносили в пробирку со средой КОДА. Среда КОДА – жидкая элективная среда для выявления наличия БГКП. Признаком развития лактозоположительных энтеробактерий (БГКП) является изменение цвета среды с тёмно-зелёного до яркожелтого при температуре 37°С в течение 24ч. Лактозоотрицательные энтеробактерии при развитии на среде КОДА дают помутнение среды без изменения цвета.

Из пробирок со средой КОДА проводили подтверждающий высев на плотную дифференциальную среду Эндо. Далее посевы инкубировали при температуре 37±1°С в течение 18-24 ч. При наличии на среде Эндо тёмно-красных, красных, розовых и бесцветных колоний с металлическим блеском и без него, их принадлежность к БГКП подтверждали микроскопированием окрашенных по Граму мазков. Результат считается положительным при обнаружении даже одной колонии с признаками бактерий группы кишечных палочек. При обнаружении в посевах грамотрицательных неспорообразующих палочек, сбраживающих при температуре 37°С лактозу с образованием кислоты и газа, дают заключение о том, что обнаруженные микроорганизмы относятся к бактериям группы кишечных. После пересева на чашках со средой Эндо патогенных микроорганизмов не выделили.

Определение золотистого стафилококка (Staphylococcus aureus). Метод выявления St. aureus основан на высеве определенного количества продукта на элективные питательные среды с повышенным содержанием хлорида натрия и подтверждением принадлежности выросших микроорганизмов к St. aureus по реакции коагулирования плазмы крови кролика.

Из рыбы или её 10-кратных разведений проводили посев в солевой бульон в соотношении к питательной среде 1:9. При этом при выделении St. aureus из 1 г продукта использовали 10 см3 его первого разведения. Посевы инкубировали при

165

температуре 37±1°С в течение 24-48 ч, затем пересевали поверхностным методом на яично-желточный солевой агар. Посевы просматривали после 18-24 ч. инкубирования при температуре 37°С.

На яично-желточном солевом агаре могут расти колонии St. aureus белого и различного оттенка жёлтого цвета с образованием вокруг колоний зоны лецитиназной активности, при отсутствии колоний дают заключение об отрицательном посеве на St. aureus. Принадлежность обнаруженных колоний к St. aureus подтверждают микроскопированием мазков, окрашенных по Граму. При микроскопировании выявляют колонии с мелкими, собранными в гроздья грамположительными кокками. Из колоний стафилококков проводят пересев на скошенный питательный агар. Посевы термостатируют при температуре 37±1°С в течение 2448 ч. Проверяют по мазкам, окрашенным по Граму, чистоту культуры выделенных стафилококков на скошенном агаре. Выделенные чистые культуры проверяют на способность коагулировать плазму крови кролика. Для этого разведённую плазму крови кролика разливают по 0,5 см3 в стерильные пробирки. В неё вносят по петле анализируемых культур, оставляя одну пробирку с разведённой плазмой крови, не засеянной в качестве контроля. Внесенную культуру тщательно перемешивают и инкубируют при температуре 37±1°С в течение 3-6 ч. Если через 6 ч. коагуляции плазмы не произошло, то пробирки оставляли при температуре плазмы 30±5 °С на 24 ч. При отсутствии свёртывания плазмы или появлении отдельных нитей через 24ч. исследуемую культуру стафилококков относят к коагулазоотрицательной. Реакцию считают положительной при обнаружении даже небольшого компактного сгустка. При получении положительной реакции плазмокоагуляции считают, что в посевах обнаружен St. aureus [4, 6]. При просмотре посевов испытуемых образцов патогенной микрофлоры не было выявлено.

Определение бактерий рода Salmonella проводят на высеве определенного количества продукта на жидкие неселективные и селективные питательные среды с выделением чистых культур на диагностических средах с морфологическими и культуральными признаками сальмонелл; в проверке биохимических свойств выделенных культур и серологической идентификации.

При исследовании рыбы на наличие бактерий рода Salmonella 25 г измельченной рыбы высевают в пептонно-буферную воду в соотношении 1:5 и инкубируют в термостате при температуре 37±1°С в течение 16-24 ч. Далее 10 см3 культуры из пептонно-буферной воды пересевают в 90 см3 в среду обогащения Кауфмана и селенитовый бульон и инкубируют при 37±1°С в течение 24-48 ч. Затем делают пересев петлей на висмут-сульфитный агар (ВСА) и на чашки Петри со средой Эндо. Инкубируют посевы при 37°С в течение 24 ч., а на ВСА - 48 ч. Сальмонеллы растут на висмут-сульфитном агаре в виде черных колоний с металлическим блеском с окраской среды под колониями в чёрный цвет; на среде Эндо - в виде бесцветных колоний.

При выделении подозрительных колоний рода сальмонелл делают пересев на среду Крумвиде-Олькеницкого или агар Клиглера. На данной среде при росте

166

сальмонелл столбик желто-бурый в связи с тем, что почерневший осадок адсорбирует синий цвет разложившейся глюкозы, косая поверхность - янтарная. Биохимические свойства культур определяют путем расщепления сахаров, мочевины, образования индола, сероводорода, утилизации цитрата.

Общее микробное число КМАФАнМ, КОЕ/г в мясе мороженой рыбы из р. Днестр и Кучурганского лимана составило 1,0x102, что не превышает допустимые нормы (табл.).

Для определения БГКП исследуемый материал вносили в среду КОДА, после термостатирования со среды КОДА провели подтверждающий высев на плотную дифференциальную среду Эндо и инкубировали. На среде Эндо рост колоний отсутствовал (рис.).

Staphylococcus aureus культивировали в солевом бульоне. При исследовании мяса рыбы, стафилококк не обнаружен (рис.).

Рис. Посев на питательные среды: солевой агар и среда Эндо, с отсутствием роста колоний.

Данные исследования показали, что у пресноводной рыбы из реки Днестр и Кучурганского водохранилища патологических микроорганизмов не было обнаружено.

Литература

1.Голубев В.Н. Обработка рыбы и морепродуктов / В.Н. Голубев, Т.Н. Назаренко, Е.И. Цыбулько. - М.: ИРПО; Изд. Центр «Академия», 2001. С. 192.

2.Моисеев П.А. Ихтиология / Азизова Н.А., Куранова И.И.. - М: Легкая пищевая промышленность, 1981. 373с.

3.Мошу А. Рыбы среднего и Нижнего Днестра (справочник Хранителей реки) / Тромбицкий И. - Изд.: Кишинэу. - 2013. 139 с.

167

4.Постановление Правительства Республики Молдова № 435 от 28.05.2010 г. «Об утверждении Специальных норм гигиены для продуктов животного происхождения» (Официальный монитор РМ, 2010 г., № 85-86, ст. 499) Пост. Правит. № 239 от 26.03.2009 г.

5.Пронин В.В. Ветеринарно-санитарная экспертиза с основами технологии и стандартизации продуктов животноводства. Практикум : учебное пособие / В.В. Пронин, С.П. Фисенко. — 2-е изд., доп., перераб. — Санкт-Петербург : Лань, 2012. 240 с.

6.Рязанова О.А. Экспертиза рыбы, рыбопродуктов и нерыбных объектов водного промысла. Качество и безопасность: учебник / О.А. Рязанова, В.М. Дацун, В.М. Позняковский ; под редакцией В.М. Позняковского. — Санкт-Петербург : Лань, 2016. 572 с.

7.Санитарные правила и нормы. СанПинМЗиСЗ ПМР 2.3.2.1078-09 "Гигиенические требования безопасности и пищевой. ценности пищевых продуктов" – ПМР: Министерство здравоохранения и социальной защиты ПМР, 2009.

8.Шалак М.В., Технология переработки рыбной продукции / М.В. Шалак, М.С. Шашкова, Р.П. Сидоренко. - МН: Дизайн ПРО, 1998. 240 с.

9.European Red list of Globally Threatened Animals and Plants (1991) Economic commission for Europe, Geneve and New York. 2011. 214р.

10.Nelson J. S. Fishes of the world // John Wiley and Sons, Inc. New York. 4th edition. – 2006. 601 p.

УДК 636.652:636.087

Г.В. Чащухина, Е.А. Смирнов – студенты 2-го курса магистратуры; О.С. Микрюкова – научный руководитель, доцент, канд. с.-х. наук, ФГБОУ ВО Пермский ГАТУ, г. Пермь, Россия

ВЛИЯНИЕ КОРМОВОЙ ДОБАВКИ АМАЛИВ НА ПРОДУКТИВНОСТЬ КУР – НЕСУШЕК РОДИТЕЛЬСКОГО СТАДА БРОЙЛЕРОВ

Аннотация. В данной статье рассмотрена эффективность применения функционального кормового ингредиента АМАЛИВ на курах-несушках родительского стада бройлеров, который позволил увеличить яйценоскость на 2,33%, массу яйца и сократить расход корма от 0,11 до 0,28% .

Ключевые слова: Амалив, куры несушки, однородность, продуктивность, родительское стадо.

Применение ростостимулирующих антибиотиков в комбикормовом производстве Европейского союза запрещено с 2006 года, однако в промышленном птицеводстве в Европе до сих пор необходимо использовать противомикробные препараты, в частности кокцидиостатики, которые способствуют низкому уровню инфекционных заболеваний у птицы и высокому уровню ее продуктивности.

Функционально кормовой ингредиент АМАЛИВ со стороны лечебнопрофилактических эффектов повышает иммунитет цыплят, устраняет либо корректирует анемию, снижает последствия стресса, улучшает функцию пищеварения, вызывает гепатопротекторный эффект, обладает антиоксидантными свойствами, а также улучшает репродуктивную функцию.

Однородность стада — основной фактор, способствующий повышению продуктивности птицы при промышленном выращивании. С экономической точки зрения однородное стадо более прибыльно и технологично в содержании. Кроме того, при этом повышается эффективность всех проводимых на фабрике мероприятий, в том числе ветеринарно-санитарных, а также уменьшается расход

168

корма на единицу продукции и расходы на убой и переработку. Однородность стада оказывает влияние на сохранность поголовья, интенсивность и продолжительность яйцекладки, и другие[1, 2].

Низкая однородность указывает на отклонения от нормы в росте и развитии птицы и обязательной корректировки условий содержания и кормления. Однородность (если показатель достигает 80%, а лучше – 85 - 90%) –необходимое условие высокой продуктивности. Это исключительно важно для хозяйств, выращивающих ремонтную молодку.

Результаты опытов и научных трудов отечественных ученых и специалистов крупных генетических компаний указывают, что низкая однородность суточных цыплят тесно взаимосвязано с их здоровьем в первую неделю жизни.

Первый месяц (особенно первые 5–10 дней) — острокритическое время в жизни ремонтного молодняка: в этот период фиксируют максимальный отход птицы. Требуется стимулировать работу пищеварительной системы, чтобы оптимизировать усваивание корма и реабсорбцию питательных веществ, создать защиту от патогенов и нормализовать деятельность иммунной системы.

Необходимый компонент желудочно-кишечного тракта — кишечная микрофлора. Микрофлора желудочно-кишечного тракта не только способствует развитию местного иммунитета, но и исполняет главную роль в формировании и развитии иммунной системы цыпленка, а кроме того, поддерживает ее функции у взрослых особей[3, 4].

Хорошо известно, что фитобиотки восстанавливают микрофлору кишечника птицы. Препараты являющиеся, комплексом растительного происхождения положительно влияют, на секреторную функцию желудочно-кишечного тракта, пробуждают аппетит, повышают усвояемость корма и снижают инфекционную нагрузку на организм. Научно установлено и подтверждено на практике, что применение эффективных схем введения фитобиотических добавок в рационы цып- лят-бройлеров способствует увеличению однородности стада на 10–15%[4].

Со стороны производственных эффектов улучшает усвояемость корма (как органических, так и минеральных веществ), конверсию корма (снижает расход корма на кг привеса на 0.15 кг), однородность стада, увеличивает среднесуточные привесы (7-12 %),яичную продуктивность (3-7%), сокращает падеж (в 2 - 2.5 ра-

за)[5].

Методика. На АО «Птицефабрика Пермская» был проведён научно хозяйственный опыт, по использованию функционального кормового ингредиента Амалив на курах-несушках родительского стада бройлеров. Контрольная и опытная группа составляла по 10 тысяч голов при напольном содержании. В течение 20 недель опытной группе в рацион вводили кормовую добавку Амалив в период с 30до 59недельного возраста в дозировке 100г/т корма. В ходе опыта учитывали продуктивность птицы, живую массу и однородность поголовья несушек, яйценоскость на среднюю несушку, средний вес яйца и расход корма.

169