227. Факторы патогенности, токсины возбудителя чумы. Пути передачи

Токсннообразованве. Бактерия чумы чрезвычайно вирулентна для человека. Она образует термолабильный экзотоксин в виде двух форм (А и В) и «мышиный» токсин, а также обладает способностью вызывать гемолиз эритроцитов и растворять фибрин. Континентальные штаммы образуют уреазу. «Мышиный» токсин получен в очищенном состоянии в виде активного препарата. Его токсичность чрезвычайно велика: на 1 мг азота токсина приходится 86 000 смертельных мышиных доз.

-адренергический блокатор и его введение крысам и мышам приводит к гипотермии, потере чувствительности к адреналину и предотвращению мобилизации жирных кислот. Он может быть инактивирован формалином с образованием нетоксичного, но антигенного анатоксина. Хотя антитела к анатоксину реагируют с мышиным токсином, они не обеспечивают защитного иммунитета к чумеМышиный токсин действует как

Липоплисахаридный эндотоксин Y. pestis подобен по физиологической активности другим эндотоксинам энтеробактерий. Требуются относительно высокие дозы (приблизительно 500 мкг), чтобы убить мышей и морских свинок. Неясно, какую роль играет эндотоксин в патогенезе чумы; в терминальных стадиях, когда в тканях присутствует очень большое количество бактерий, он может вносить существенный вклад в смертельный исход инфекции.

228. Чума, пути передачи. Лабораторная диагностика и специфическая профилактика чумы

В зависимости от клинической формы и места локализации возбудителя объектами для исследования могут быть: содержимое бубона при бубонной форме, отделяемое язвы при кожной форме, испражнения при кишечной форме, слизь из зева и мокрота при легочной форме, кровь при септицемической форме, патологоанатомический материал (органы, кровь, содержимое лимфатических узлов, легкие), трупы грызунов, блохи, вода, пищевые продукты, воздух и др. Исследования проводят по этапам:

1) микроскопия мазков, фиксированных в смеси Никифорова, окрашенных по Граму и метиленовым синим по Леффлеру;

2) посев исследуемого материала на питательные среды с выделением чистой культуры и ее идентификацией; для подавления сопутствующей микрофлоры к 100 мл мясо-пептонного агара прибавляют 1 мл 2,5% раствора сульфита натрия и 1 мл насыщенного спиртового раствора генцианового фиолетового,

3) биологическая проба, воспроизводимая на морских свинках с выделенной чистой культурой, а также с материалом, из которого трудно получить культуру. В последнем случае исследуемый материал в виде густой взвеси втирают морским свинкам в выбритый участок кожи в области живота

229. Спирохеты. Морфология, культуральные и тинкториальные свойства биохимические особенности, антигенная структура

Спирохеты – это извитые формы бактерий, длинные (3-500 мкм) и тонкие (до 0,1 мкм).+По сравнению с остальными бактериями, спирохеты имеют уникальную ультраструктуру: цитоплазматический цилиндр у них переплетен с одной или несколькими осевыми фибриллами, состоящими из флагеллина, один конец которых прикреплен к субтерминальному диску (блефаропласту, как у простейших). На противоположенных концах клетки спирохет расположены по блефаропласту, соответственно две фибриллы (или два пучка фибрилл) направлены друг навстречу другу с противоположенных концов клетки и пересекаются в ее середине, а затем выходят за пределы клетки, уподобляясь жгутикам обычных бактерий. Из-за того, что у большинства спирохет сократительные фибриллы располагаются в периплазматическом пространстве (а клеточная стенка у них – грамотрицательного типа), их часто называют периплазматическими жгутиками.

Морфология. Представляет собой типич¬ные по морфологии трепонемы размером 0,09/0,5x5/20 мкм, имеющие 8—12 завитков. Двигательный аппарат представлен идущими от каждого полюса клетки тремя периплазма-тическими фибриллами. Слабо воспринимает анилиновые красители. По Граму не окрашива¬ется. По Романовскому—Гимзе окрашивается в бледно-розовый цвет.Выявляется при импре¬гнации серебром, а также с помощью фазово-контрастной и темнопольной микроскопии. Культуральные свойства. Вирулентные штам¬мы на питательных средах не растут. Для на¬копления культуры заражают кролика в яичко. Невирулентные штаммы можно культивиро¬вать на средах, содержащих мозговую и почеч¬ную ткань, в анаэробных условиях при 35 °С. Культивирование приводит к потере виру¬лентных и изменению антигенных свойств.