Человек заражается возвратным тифом при втирании гемолимфы раздавленных вшей в кожу при расчесывания места укуса. Заболевание встречается во время соц бедствий и войн. На тер-рии РФ в настоящее время не регистрируется.
Эндемический возвратный тиф— зооноз. Возбудители - В. Duttoni, В. Persica, B. caucasica (более 20 видов бореллий, циркулирующих в различных очагах тропиков и субтропиков разных стран).
Резервуар - грызуны, клещи.
Человек заражается через укусы клещей.
Патогенез: Инкубационнй период 3-14 дней. Попав во внутреннюю среду организма, боррелии внедряются в клетки лимфоидно-макрофагальной системы, где размножаются и поступают в кровь, вызывая лихорадку, головную боль, озноб. Каждая такая атака сопровождается повышением титра АТ. Взаимодействуя с АТ, боррелии образуют агрегаты, которые нагружаются тромбоцитами, вызывая закупорку капилляров, следствием чего является нарушение кровообращения в органах. Под влиянием ат большаячасть бореллий погибает, но из-за особенности генетического аппарата происходит вариация антигенного состава борелий
Прогноз – благоприятный, летальность -1%.
Иммунитет: к эпидемическому возвратному тифу гуморальный, непродолжительный.
Микробиологическая диагностика:
Бактериоскопический метод — обнаружение возбудителя в крови, окрашенной по Романовскому— Гимзе. Биопробу ставят для дифференциации В. recurrentis от возбудителей эндемического возвратного тифа: морские свинки легко заражаются вощбудителями клещевого возвратного тифа, а крысы В. recurrentis . В качестве вспомогательного используют серологический метод с постановкой РСК.
Лечение: антибиотики тетрациклинового ряда, левомицетин, ампициллин.
Профилактика. Неспецифическая, включает борьбу с переносчиками и с завшивленностью территории.
11. Возбудители гнойно-септических инфекций. Принципы лабораторной диагностики.
ГСИ (гнойно-септические инфекции) – это инфекции, вызываемые различными микроорганизмами и сопровождающиеся воспалительной реакцией с образованием гноя.
Возбудители ГСИ
I. Грибы. Н-р, грибы р. Candida способны контаминировать раны, переходя с открытых участков кожи, вызывать катетер-ассоциированные инфекции.
II. Бактерии.
A. Аэробы и факультативные анаэробы:
- Грамположительные кокки (стафилококки, стрептококки, энтерококки);
- Грамотрицательные кокки (представители семейства Enterobacteriaceae (E. Coli, клебсиеллы); род
Pseudomonas; род Acinetobacter и др.). о
B. Облигатные анаэробы:
-Спорообразующие – род Clostridium, семейство Bacillaceae (возбудители газовой гангрены, столбняка, ботулизма, псевдомембранозного колита и т.д.);
-Неспорообразующие – род Bacteroides, род Prevotella, род Porphyromonas.
Принципы лабораторной диагностики ГСИ, вызванных аэробными и факультативноанаэробными бактериями
1. Бактериологическое исследование крови
1 день. Забор венозной крови→посев крови у постели больного на жидкие питательные среды в соотношении 1/10-1/60, чтобы путем разведения ослабить бактерицидные свойства крови. При этом используют следующие питательные среды:
-для аэробных и факультативно-анаэробных микроорганизмов (сахарный бульон(МПБ+глюкоза) и двухфазная среда (МПБ+глюкоза+МПА));
-Для облигатно-анаэробных бактерий – тиогликолевая среда;
Посевы доставляют в лабораторию и помещают в термостат.
2-36 день. Посевы инкубируют до 6 недель ежедневным просмотром первые 8 дней.
Есть видимый рост→делают мазки и окрашивают по Граму→в зависимости от результатов, делают высевы на соответствующие питательные среды→выделяют чистую культуру→идентификация
Нет видимого роста→с сахарного бульона на 3 и 5 день делают высев на кровяной агар→при отрицательном результате дают предварительный отриц. Результат.
2. Бактериологическое исследование отделяемого раны
На 1 этапе проводится микроскопия мазка по Граму с дальнейшим высевом на питательные среды (инкубация в термостате 5 суток с ежедневным просмотром):
-Кровяной агар – для выделения широкого круга возбудителей (стафилококк, стрептококк, энтерококк)
-Сахарный бульон – те же м-ы. Но в модификации (с 2-4%глюкозой – среда Сабуро) оптимален для выделения дрожжей
-Среда для контроля стерильности – для выделения облигатных анаэробов и факультативных анаэробов;
На 2 этапе выделяют чистую культуру, проводят идентификацию. На 3 этапе определяют АБрезистентность (метод стандартных дисков) и при необходимости проводят внутривидовое типирование.
Лабораторная диагностика анаэробных инфекций
Бактериоскопический метод. Исследуемый материал - мазки, приготовленные из раневого отделяемого, отечной жидкости, некротизированной ткани. Проводится микроскопия данных мазков окрашенных по Граму, Цилю-Нильсену и Гинсу-Бурри. Обнаружение в препаратах крупных прямых грамположительных палочек, образующих капсулы и центрально или субтерминально расположенные споры - газовая гангрена.
Экспресс диагностика - прямой метод иммунофлюоресценции.
Бактериологический метод. Исследуемый материал аналогичен. На 1 этапе производят посев на обогащенную тиогликолевую среду с желчью и канамицином. Далее выделяют чистую культуру (2 этап). Производят высев со среды обогащения на среду с анаэробным агаром Цейсслера (анаэробный кровяной МПА). Производится инкубация посевов в анаэробной атмосфере. Данная атмосфера достигается 3-мя способами:
1.Физический – культивирование в микроанаэростате;
2.Химический – использование веществ, поглощающих кислород(пирогаллол), использование восстановителей для снижения ок.-восст. Потенциала (цистеин, тиогликолят натрия)
3.Биологический – культивирование совместно с анаэробами; в толще плотной среды; заливка высоким слоем вазелинового масла/парафина.
На 3 этапе производится учет культуральных свойств на среде Цейсслера (через сутки регистрируются– шероховатые (реже – гладкие), крупные, плоские сероватые колонии с зоной гемолиза.) Осуществляется микроскопия мазка по Граму с дальнейшим отколом колонии на анаэробные агары с углеводами.
На 4 этапе происходит изучение биохимических свойств и токсигенности. Далее производится окончательная идентификация культуры.
Далее представлена информация по стафилококкам с дополнениями Ниловой, что соответствует вопросу №49. Для более полного ответа см. вопросы №49, 50, 7, 26 (они все относятся к теме).
Аэробные грамположительные кокки
Стафилококки (staphyle – гроздь, coccus – ягода)
Таксономия – относятся к роду Staphylococcus, объединяющему порядка 32 видов (по учебнику Зверева). Наиболее значимыми для человека являются S. aureus (золотистый стафилококк), S. epidermidis (эпидермальный), S. saprophyticus (сапрофитный).
Классификация. Патогенетически и клинически значима классификация по отдельным признакам:
-Продукция плазмокоагулазы (сворачивает плазму→ на поверхности стафилококка образуется фибриновая пленка→бактерия защищена от иммуннной системы человека). Коагулазоположительный стрептококк (КПС) – S. aureus, коагулозоотрицательные (КОС) - S. epidermidis, S. saprophyticus.
-Устойчивость к новобиоцину (антибиотик) - S. saprophyticus устойчив.
-Усточивость к полимиксину (антибиотик) - S. epidermidis, S. aureus – устойчивы.
Морфология.
Стафилококки – Гр(+) кокки (фиолетово-синие!), характерны скопления в виде гроздьев винограда (т.к. делятся в разных плоскостях, но могут располагаться и поодиночке), неподвижные, не образуют спор, могут иметь капсулу (на полужидких средах с сывороткой или плазмой). 0,5-1.5мкм в диаметре.
Культуральные свойства.
Хорошо растут на простых питательных средах (МПА, МПБ). Элективными средами являются ЖСА (желточно-солевой агар), т.к. стафилококки устойчивы к высокому содержанию NaCl (10-15%). Температурный оптимум 35-37С, pH=6-8.
На плотных средах – непрозрачные, круглые (2-4мм) ровные пигментированные колонии (S.aureus – золотистый пигмент+полный гемолиз на кровяном агаре, S. epidermidis – белый+часть штаммов способна к гемолизу, S. saprophyticus – нет пигмента, не способен к гемолизу).
Биохимические свойства.
Обладают высокой биохимической активностью. Каталаза-положительны (защита от действия кислорода), оксидаза-отрицательны (анаэробы). Углеводы ферментируют с образованием кислоты без газа, образуют H2S. Устойчивы ко многим АБ, что определяется плазмидами и хромосомными мутациями.
Антигенная структура.
Очень сложная. Более 50 антигенных субстанций, которые делят на:
-Родовые – могут перекрестно реагировать с изоантигенами человека и приводить к аутоиммунным заболеваниям;
-Видовые – тейхоевые кислоты, белок А у S. aureus;
-Типовые – определяют типовую специфичность.
Факторы патогенности.
Факторы адгезии – белки-адгезины, полисахаридная капсула, тейхоевые кислоты (к эпителиальным клеткам).
Факторы агрессии и инвазии (экзоферменты) – фибринолизин (разрушение фибриновых сгустков с образованием микротромбов для генерализации инфекции), гиалуронидаза
(разрушая гиалуроновую кислоту, способствует распространению возбудителя), липаза (разрушает оболочки клеток, жировые пробки в устье волосяных фолликулов), ДНКаза и др.
Антифагоцитарные факторы – обеспечивают выживание и дальнейшее размножение. Полисахаридная капсула (механическая защита), белок А (находится на поверхности, связывает Fc-фрагменты антител→стафилококк окружается «чехлом» из АТ→снижается их опсоническая активность (больше не способствуют фагоцитозу)), тейхоевые кислоты (ингибируют фагоциты, повышают адгезию), плазмокоагулаза (см.ранее), каталаза(защита от кислородзависимых механизмов фагоцитоза).
Экзотоксины. Гемолизины альфа, бета, гамма, дельта – повреждают мембраны, в
особенности – эритроцитов и лейкоцитов. Лейкоцидин – избирательно разрушает лейкоциты. Токсин синдрома токсического шока – суперантиген, вазотропное и нейротропное действие. Энтеротоксины – суперантигены, пищевые интоксикации. Эксфолиативные токсины – разрушают межклеточные контакты в эпидермисе→синдром ошпаренной кожи.
Эпидемиология.
Ист. Инфекции – больные, особенно с открытыми очагами поражения и бактерионосители (мед.персонал).
Механизмы и пути передачи: фекально-оральный (алиментарно), артифициальный (через нестерильные медицинские инструменты), аэрогенный (воздушно-капельный, воздушно-пылевой);
Наибольшая опасность – внутрибольничные штаммы.
*Возможна эндогенная оппортунистическая инфекция при сниженном иммунном статусе.
Экология.
Широко распространены, являются представителями нормальной микрофлоры человека, колонизируют слизистую носа, ротовой полости, кожу.
Крайне устойчивы в окружающей среде, устойчивы к этанолу, но чувствительны к анилиновым красителям (бриллиантовый зеленый).
Патогенез.
Входные ворота – повреждение кожи или слизистых.
Инкубационный период –от несколких часов до нескольких дней. Начало острое. Местный воспалительный очаг→при сниженном иммунитете генерализация.
3 основных синдрома стафилококковой инфекции: токсический синдром – из-за действия экзотоксинов. Общая интоксикация, гиперемия, рвота; инфекционно-септический синдром – местное воспаление; аллергический компонент – следствие сенсибилизации. По клинике – различны.
S.epidermidis→эндокардиты, артриты.
S. saprophyticus→цистит, пиелонефрит (инф. мочевого тракта);
Иммунитет.
Клеточный и гуморальный, нестойкий. Узкоспецифический (против конкретного штамма).
Лабораторная диагностика.
Ведущий метод – бактериологический (индентификация. Экспрессопределение tox-антигена в ПЦР, латекс-агглютинация. Серологический метод – не имеет большого значения, но используется в диагностике хронических форм.
Профилактика и лечение.