2018 ВИР и БИОТ ВЕТ л.з. (методичка)
.pdfФлуоресцирующие сыворотки или их глобулиновые фракции длительное время сохраняют специфическую активность в лиофилизированном состоянии.
При использовании каждой серии конъюгата необходимо опытным путем проверить рабочее разведение, т.к. оно зависит от качества флуоресцирующей сыворотки и от освещения препарата в люминесцентном микроскопе. С этой це-
лью микроскопируют препараты, содержащие специфический антиген, окрашен-
ные конъюгатом, взятым в разных разведениях (обязательно на 1-2 разведения выше и ниже рабочего разведения, указанного на этикетке препарата), выбирают наибольшее разведение, дающее интенсивное свечение (красящий титр), и удваи-
вают его.
Приготовление препаратов. Используют мазки, отпечатки, гистосрезы и культуры клеток .
Предметные стекла для приготовления препаратов должны быть тонкими,
чистыми, обезжиренными, бесцветными и не иметь царапин. Для этого их про-
мывают в нейтральных детергентах, прополаскивают в дистиллированной воде и сохраняют в спирте или смеси спирта с эфиром. Перед употреблением чистые стекла проводят через пламя горелки и охлаждают. Все надписи делают простым карандашом на специально подготовленной матовой площадке у края предметно-
го стекла. Надписи восковым карандашом при фиксации препаратов растворяют-
ся и образуют на стекле восковую пленку, мешающую обработке мазков флуорес-
цирующими сыворотками.
Мазки готовят из смывов и других жидкостей. Мазки-отпечатки готовят из тех органов и тканей, в которых предполагается наибольшая концентрация вируса.
Для диагностики бешенства применяют мазки-отпечатки из мозга; ринопневмонии лошадей, гепатита собак - из печени; гриппа, ИРТ КРС, аденовирусной инфекции и других - мазки из носовых смывов, а также отпечатки слизистых оболочек носо-
вой полости, бронхов, трахеи; оспы - мазки из везикул, папул.
Для выявления вируса гриппа или других возбудителей респираторных болез-
ней очищают носовой ход от слизи, берут мазок ватным тампоном, который поме-
щают в пробирку с забуференным физраствором или питательной средой для КК
111
(3 мл). Тампон встряхивают, отжимают и удаляют, раствор центрифугируют и из осадка делают мазки диаметром 1,5 см каждый на стекле. Исследование слизистых оболочек, выстланных многослойным плоским эпителием, например, глотки,
конъюнктивы, влагалища, требует приготовления соскобов после очистки слизи-
стой оболочки. Поверхностные ороговевшие клетки таких эпителиев обладают сильной аутофлуоресценцией и не годятся для исследования. Поэтому препараты готовят из клеток скарифицированных участков, содержащих базальные слои эпи-
телия.
Из органов готовят отпечатки, прикладывая быстрым движением предметное стекло к поверхности органа. Отпечаток должен быть тонким и равномерным.
Мазки-отпечатки подсушивают на воздухе, затем фиксируют и сохраняют в холодильнике до исследования (при минус 4°С, минус 70°С).
Для контроля таким же образом готовят препараты из органов здоровых жи-
вотных.
Если вирусы предварительно накапливают в КК, то последние выращивают на узких пластинках покровного или такого же размера обрезках предметного стекла.
Извлеченные в разные сроки после заражения из пробирок с КК, эти пластинки ос-
торожно отмывают от питательной среды физраствором или фосфатным буфером.
Затем сушат при комнатной температуре на воздухе на чистом листе фильтроваль-
ной бумаги, положив клеточным слоем вверх, и фиксируют.
Наилучший фиксатор для вирусных антигенов - чистый ацетон, охлажденный до минус 10 - минус 15 °С; можно также использовать метиловый спирт. Фикси-
руют препараты 10-20 мин. Продолжительность и температура фиксации могут колебаться в зависимости от вида вируса. При особо опасных инфекциях время фиксации увеличивают. Например, при работе с уличным вирусом бешенства препараты фиксируют не менее 4 ч.
Различают два основных способа применения флуоресцирующих антител:
прямой и непрямой.
112
При использовании прямого, или
одноступенчатого, способа (Weller и
Coons, 1954) для индикации различных вирусных антигенов применяют соот-
ветствующие каждому антигену флуо-
ресцирующие антитела. Непосредст-
венно на препарат наносят конъюгат и выдерживают в течение 20-60 мин при
температуре 37 °С во влажной камере, Рисунок 35 - Свечение вируса при РИФ. некоторые исследователи предпочита-
ют проводить эту процедуру при 4 °С, удлиняя время. Препараты отмывают физра-
створом (рН 7,2-7,5) от не связанного с антигеном конъюгата. Затем их подсуши-
вают на воздухе, наносят нефлуоресцирующее масло и исследуют под микроско-
пом.
Результаты учитывают по интенсивности и специфичности флуоресценции исследуемого объекта с учетом структурных особенностей по следующей шкале
(рисунок 35):
(++++) - яркая, сверкающая флуоресценция изумрудно-зеленого цвета;
(+++) - яркая флуоресценция зеленого цвета;
(++) - слабая флуоресценция желтовато-зеленого цвета;
(+) - очень слабая флуоресценция неопределенного цвета;
(-) - объект не флуоресцирует.
В качестве обязательного контроля берут препараты из материалов, не содер-
жащих искомый вирус (нормальные тканевые культуры, отпечатки органов здоро-
вых животных и т. п.). Их обрабатывают так же, как опытные препараты, и одно-
временно с ними.
Выпускаемые биофабриками сухие специфические иммунные люминесци-
рующие сыворотки и альбумины перед окрашиванием мазков растворяют в дис-
тиллированной воде в объеме, указанном на этикетке ампулы. Хорошие препара-
ты должны легко и без осадка растворяться. Если при этом препарат мутнеет или
113
образуется осадок, то от мути или осадка освобождаются центрифугированием при 6000 мин-1. Растворенными препаратами, сохраняемыми при 4°С, можно пользоваться в течение нескольких недель. Перед обработкой исследуемых пре-
паратов готовят рабочую смесь специфического конъюгата с люминесцирующим альбумином. Наиболее выгодное соотношение между флуоресцирующим иммун-
ным глобулином, меченным ФИТЦ, и альбумином, конъюгированным с родами-
ном, приходится определять опытным путем для каждой новой серии любого из этих препаратов, ибо характеристика их активности с момента выпуска до приме-
нения может изменяться.
Прямой метод позволяет выявить и идентифицировать антиген. Для этого нужно иметь на каждый вирус флуоресцирующую сыворотку.
При непрямом, или двухступенчатом, способе вначале антиген обрабаты-
вают гомологичными нефлуоресцирующими антителами (1-я ступень). Образует-
ся комплекс антиген + антитело, для обнаружения которого применяют флуорес-
цирующую антивидовую сыворотку, соответствующую виду животного - проду-
цента гомологичных антител. Антивидовые сыворотки получают, иммунизируя животных глобулинами животных тех видов, которые служат прдуцентами анти-
вирусных антител. Чаще применяют антикроличьи, антилошадиные и сыворотки против глобулинов морской свинки.
При непрямом методе на фиксированный препарат (как описано выше) нано-
сят немеченую сыворотку или гаммаглобулины, содержащие антитела к предпо-
лагаемому вирусу, после чего препарат в течение 30 мин выдерживают при темпе-
ратуре 37°С. Отмывают несвязанные антитела. На препарат наносят конъюгат, со-
держащий антитела против гаммаглобулинов животных того вида, на которых по-
лучали антивирусные антитела, т.е. если использовали антитела, полученные на курах, то применяют меченные флуорохромом антитела против глобулинов кур.
Время окрашивания этим конъюгатом такое же, как и при прямом методе.
Препарат отмывают для удаления несвязанных меченых антител, наносят не-
флуоресцирующее масло и исследуют под люминесцентным микроскопом.
114
Непрямой способ имеет ряд преимуществ. Его применяют не только для об-
наружения антигена, но и для выявления и титрования антител. Этот метод в не-
сколько раз более чувствителен, чем прямой, т.к. каждая молекула антигена свя-
зывает обычно больше чем одну молекулу антитела. Эти антитела, соединяющие-
ся с изучаемым антигеном, в свою очередь, являются антигенами для флуоресци-
рующего антиглобулина, которого связывается значительно больше. Кроме того,
этот метод требует одной меченой сыворотки для обнаружения антигенов различ-
ных вирусов.
Оба варианта непрямого метода применяются как для обнаружения и иден-
тификации антигена, так и для выявления и титрования специфических антител.
Микроскопирование мазков из заведомо известных вируссодержащих материа-
лов, обработанных различными разведениями исследуемых сывороток, позволяет обнаруживать специфические антитела и определять их титр в этих сыворотках.
Этот метод существенно упрощает и ускоряет серологическую диагностику ви-
русных инфекций.
Благодаря специфичности, высокой чувствительности, доступности, быстро-
те и относительной простоте МФА используется с целью индикации и идентифи-
кации вирусных антигенов (особое значение приобретает этот метод для тех ви-
русов, которые не обладают цитопатогенными, гемагглютинирующими и гемад-
сорбирующими свойствами); выявления и титрования противовирусных антител.
Перечень контрольных вопросов:
1.Принцип работы люминесцентного микроскопа.
2.Флуорохромы.
3.Конъюгаты.
4.Подготовка препаратов к исследованию.
5.Флуорохромирование.
6.Прямой РИФ.
7.Непрямой РИФ.
8.Задачи, которые можно решить с помощью постановки РИФ.
9.Достоинства и недостатки РИФ.
115
Тема 1.11. Иммуноферментный анализ (ИФА)
Цель: изучить принцип действия и способ постановки иммуноферментного
анализа.
Содержание:
гистохимический вариант ИФА: прямой пероксидазный тест;
гистохимический вариант ИФА: непрямой пероксидазный тест;
твердофазный иммуноферментный анализ (Elisa-тест);
задачи, которые можно решить с помощью ИФА;
достоинства ИФА;
подготовка препаратов к исследованию.
Это методы, основанные на использовании в качестве метки антигенов и антител ферментов. ИФА используют в медицине, сельском хозяйстве, промышленности и контроле окружающей среды. Основные направления применения ИФА: ранняя диагностика инфекционных, онкологических и других болезней, проведение мас-
совых эпидемиологических и эпизоотологических исследований, контроль каче-
ства продукции и соблюдение санитарных норм на предприятиях медицинской,
микробиологической и пищевой промышленности.
ИФА используется для выявления и идентификации вируса и антител к нему
(у животных-реконвалесцентов) или исследования уровня поствакцинальных ан-
тител.
Применяют две модификации ИФА.
Гистохимический вариант ИФА, или иммунопероксидазная реакция ана-
логична методу иммунофлуоресценции, но отличается тем, что для постановки реакции используют антитела, меченные не флуорохромом, а ферментом, и учет результатов реакции проводят не под люминесцентным микроскопом, а под обычным световым. В этом варианте ИФА используют антитела, меченные пе-
роксидазой, т.к. ее молекулярная масса (40000) меньше, чем молекулярная масса щелочной фосфатазы (100000) и галактозидазы (150000), что способствует луч-
шему проникновению пероксидазного конъюгата сквозь клеточную мембрану.
Кроме того, пероксидаза устойчива при гистологической обработке.
116
Рисунок 36 - Схема прямого пероксидазного теста.
Материалом для выявления вирусоспецифических антигенов или вирусов с помощью иммунопероксидазнои реакции служат мазки-отпечатки различных ор-
ганов, парафиновые срезы, культуры клеток, мазки крови. Использование для им-
мунопероксидазнои реакции носоглоточных смывов несколько ограничено в свя-
зи с наличием в воспаленных клетках большого количества эндогенной перокси-
дазы, обусловливающей высокое фоновое окрашивание. Для инактивации эндо-
генной пероксидазы применяют азид натрия в сочетании с перекисью водорода и фенилгидразин. Обработку указанными реактивами проводят перед нанесением иммуноферментного конъюгата на препарат.
Иммунопероксидазную реакцию ставят в прямом и непрямом вариантах.
Прямой пероксидазный тест (рисунок 36). При выявлении антигена с по-
мощью этого метода используют противовирусные конъюгаты, т.е. конъюгаты,
полученные из антител, выделенные из специфической сыворотки, и фермент.
Конъюгаты готовят в специализированных учреждениях биопромышленности.
Для выявления вирусоспецифического антигена прямым иммунопероксидазным методом проводят этапы работы, представленные на рис.
Для этого культуру клеток, выращенную на покровных стеклах и инфициро-
ванную вирусом, или мазки-отпечатки в течение 10 мин фиксируют охлажденным до минус 10 - минус 20 °С ацетоном. Препараты высушивают на воздухе и наносят
117
на них 0,2-0,3 мл иммунопероксидазного конъюгата в рабочем разведении, кото-
рое указано на ампуле. Инкубируют 1-2 ч при 37 °С во влажной камере. Препарат в течение 15 мин тщательно промывают физраствором, споласкивают дистиллиро-
ванной водой и высушивают на воздухе. Наносят на него несколько капель ра-
створа субстрата - диаминобензидинтетрахлорида, инкубируют 5-10 мин и промы-
вают 10-15 мин в физиологическом растворе, споласкивают дистиллированной во-
дой.
В положительных случаях, т.е. при наличии антигена в исследуемом препа-
рате, после нанесения иммунопероксидазного конъюгата образуется комплекс ан-
тиген-антитело, меченный ферментом. После нанесения на препарат раствора субстрата последний под действием фермента разлагается, образуя цветной про-
дукт ферментативной реакции, хорошо видный в световом микроскопе.
Результаты учитывают с помощью светового микроскопа. Диами-
нобензидинтетрахлорид под действием пероксидазы разлагается, образуя продукт реакции голубого цвета, который быстро переходит в коричневый. В препарате видны или диффузное желто-коричневое окрашивание, или гранулы коричнево-
черного цвета. В контрольных препаратах окрашивания не обнаруживают.
Непрямой иммунопероксидазный тест применяют для выявления вирусос-
пецифического антигена. При этом используют антивидовые иммунопероксидаз-
ные конъюгаты, приготовленные в специализированных учреждениях. Преиму-
ществом непрямого метода является универсальность меченых антивидовых гло-
булинов, а также большая чувствительность его по сравнению с прямым.
118
Рисунок 37 - Схема непрямого пероксидазного теста.
Для выявления вирусоспецифического антигена культуру клеток, выращен-
ную на покровных стеклах и инфицированную вирусом, или мазки-отпечатки фик-
сируют в течение 10 мин охлажденным (минус 10 - минус 20 °С) ацетоном. Препа-
раты высушивают на воздухе и наносят на них 0,2-0,3 мл специфической к иско-
мому антигену сыворотки. Инкубируют при 37 °С 1-2 ч во влажной камере. Про-
мывают физраствором 5 мин и высушивают на воздухе. Наносят 0,2-0,3 мл анти-
видового иммунопероксидазного конъюгата в рабочем разведении, указанном на ампуле, и инкубируют при 37 °С 1-6 ч. Далее следуют процедуры, которые были описаны для прямого метода (рисунок 37).
При наличии в исследуемом материале вирусоспецифического антигена по-
сле внесения специфической сыворотки образуется комплекс антиген-антитело,
для выявления которого используют антивидовые или вторичные антитела, ме-
ченные ферментом; образуется более сложный, чем в первом случае, комплекс:
антиген-антитело-вторичное антитело-фермент. Полученный комплекс выявляют добавлением субстрата, который под действием фермента разлагается, образуя цветной продукт ферментативной реакции. Учет результатов проводят, как и в первом случае, в световом микроскопе.
Иммунопероксидазная реакция в прямом и непрямом вариантах используется для выявления вирусов бешенства, ящура, герпесвирусов, энтеровирусов и др.
119
Методы твердофазного иммуноферментного анализа основаны на приме-
нении антител (антигенов), фиксированных на нерастворимых носителях. В каче-
стве носителей используют стеклянные или нейлоновые шарики, полистироловые или керамические пробирки и микропанели. В последнее время широкое исполь-
зование в ИФА получили полистироловые микропанели. Применение их и авто-
матизация процесса постановки и учета реакции позволяют за короткое время ис-
следовать большое число образцов сывороток на наличие антител и другого мате-
риала на наличие вирусоспецифического антигена.
Твердофазный ИФА был предложен в 1971 г. Он успешно используется для обнаружения вирусоспецифического антигена, специфических антител у живот-
ных-реконвалесцентов или иммунизированных противовирусными вакцинами.
В твердофазном ИФА используют как пероксидазные, так и щелочно-
фосфатазные конъюгаты.
Для исследования большого числа образцов с помощью твердофазного ИФА необходимо иметь: полистироловые микропанели с плоским дном, автоматиче-
ские пипетки с переменным или постоянным объемом от 50 до 200 мкл, промы-
вочное устройство - автоматическое или полуавтоматическое и считывающее уст-
ройство. Анализ может быть выполнен на микропанелях и без перечисленных выше приборов. В этом случае учет результатов реакции может быть проведен ви-
зуально, без использования специальной регистрирующей аппаратуры, но в этом случае резко снижается производительность метода.
Для выявления вирусоспецифического антигена с помощью данного метода в различных биологических жидкостях наиболее часто используют метод двойных антител, или «сандвич».
Твердофазный иммуноферментный тест для обнаружения вирусоспецифиче-
ского антигена ставят по следующей схеме (рисунок 38):
120