914

увеличение количества мелких и средних форм инфузорий. Их подвижность оценивалась на 3-4 балла.

Кроме того, рН мочи у животных с алкалозом достоверно превышал показатель у клинически здоровых коров (9,0 + 0,1 при норме 7,0-8,6). Нужно отметить, что у всех обследованных животных обнаружено повышение резервной щелочности крови по сравнению со среднестатистическими показателями (в среднем 75,7 + 2,0 об%СО2 при норме 46,0-66,0 об%СО2).

Как известно, основным органом пищеварения у жвачных является рубец. У коровы контрольной группы регистрировали сохранение архитектоники слоев рубца. Поверхностный слой сосочков состоял из многослойного плоского эпителия, включающего 6-8 плотно укомплектованных рядов клеток (рис. 1). Собственная пластинка была плотной, без воспалительного инфильтрата. Клетки продольного слоя мышечной оболочки плотно прилегают друг к другу.

Рисунок 1 ‒ Сосочек рубца и слой продольных мышц у коровы контрольной группы. Гематоксилин, эозин × 400

У животных с клиническими признаками алкалоза отмечали большое количество удлиненных и истонченных сосочков (рис. 2), поверхностный слой которых состоял из многослойного плоского эпителия, 10-12 плотно упакованных и хаотично расположенных мелких клеток в базальной части и плотно упакованных крупных клеток на периферии. Наблюдали сильный отек собственной пластинки слизистой оболочки. В разных частях пластинки находилось большое количество сформированных псевдокист (пустот) различного диаметра, а также поля воспалительного инфильтрата, состоящего преимущественно из нейтрофилов.

Рисунок 2 ‒ Удлиненные сосочки и кистозные расширения эпителия и собственной пластинки слизистой оболочки рубца у коровы опытной группы.

Гематоксилин, эозин ×400 221

В собственной пластинке слизистой оболочки рубца наблюдали увеличение кровеносных сосудов, стенка которых была утолщена. Клетки продольного слоя мышечной оболочки плотно прилегали друг к другу.

Вывод. Морфологическая картина при развитии алкалоза у крупного рогатого скота характеризовалась отеком собственной пластинки слизистой оболочки рубца, наличием воспалительного инфильтрата, псевдокист различного диаметра и полнокровием кровеносных сосудов с утолщенной стенкой, что свидетельствовало о хроническом воспалении.

Список литературы

1.Ацидоз рубца как фактор, сдерживающий молочную продуктивность / А. М. Гертман, Т. С. Кирсанова, А. Ю. Федин // Кадровое и научное обеспечение инновационного развития отрасли животноводства : Материалы Международной научно-практической конференции.

Казань, 2010. - Т. 203. - С. 83–88.

2.Гепатоз у лактирующих коров и его клинико-биохимические корреляты / Р. А. Мерзленко, М. Н. Заздравных, В. В. Дронов, Г. И. Горшков // Вестник Курской ГСХА. - 2012. - № 6.

-С.78-80.

3.Требухов, А. В. Клинико-биохимические аспекты кетоза у молочных коров / А. В. Требухов // Ветеринария. - 2017. - № 10. - С. 46-49.

4.Хазимухаметова, И. Ф. Иммунологические показатели крови у коров при гепатозе в условиях техногенного загрязнения агроэкосистемы Южного Урала / И. Ф. Хазимухаметова // Известия Оренбургского ГАУ. - 2006. - № 1 (57). - С. 61-63.

5.Эленшлегер, А. А. Клинико-морфологические показатели крови при ацидозе рубца у молочных коров / А. А. Эленшлегер, В. В. Соловьева // Вестник Алтайского ГАУ. - 2016. - № 6

(140). - С. 112-115.

6.Acid-base balance of dairy cows and its relationship with alcoholic stability and mineral composition of milk / R. Fagnani, V. Beloti, A. P. P. Battaglini // Pesquisa Veterinária Brasileira. - 2014. - N. 34. - PP. 398-402.

7.Diagnosis of hepatopathy in holstein cattle with metabolic disorders / I. I. Kalugniy, D. S. Markova, A. V. Yashin, A. V. Prusakov [et al.] // IOP conference series: earth and environmental science: Agriculture, field cultivation, animal husbandry, forestry and agricultural products. - 2021. - Сер. 2. - С. 022029.

8.The dynamic of the ruminal content pH change and its relationship to milk composition /

O. Hanušovský, D. Bíro, M. Šimko // Acta Veterinaria Brno. - 2018. - №. 87, Vol. 2. - P. 119-126.

УДК 616.995.132.7:599.742.43

ОБНАРУЖЕНИЕ НЕМАТОДЫ UNCINARIA CRINIFORMIS (GOEZE, 1782)

У БАРСУКА MELES MELES (LINNAEUS, 1758) В ПЕРМСКОМ КРАЕ

Т.Н. Сивкова, А.Д. Соколова

ФГБОУ ВО Пермский ГАТУ, г. Пермь, Россия

E-mail: tatiana-sivkova@yandex.ru

Аннотация. Впервые на территории Пермского края в результате неполного гельминтологического вскрытия трупа самца барсука Meles meles (Linnaeus, 1758), добытого охотниками, по морфологическим характеристикам строения хвостовой бурсы самцов установлена инвазия Uncinaria criniformis (Goezе, 1782).

Ключевые слова: барсук, нематоды, унцинария, Пермский край.

Введение. В Пермском крае целенаправленные изучение паразитофауны диких

222

животных проводятся с 2005 года и до настоящего времени. В том числе проведено большое количество исследований лис, медведей, лосей, птиц, однако, количество проб от барсуков оставалось невысоким, в связи с этим, паразитофауна данного вида животных оставалась нераскрытой.

Являясь одним з самых активных преобразователей среды в животном мире, барсук в значительной степени способен изменять биогеноценоз. Известно, что их норы в качестве логова часто используют лисы, енотовидные собаки и другие виды животных. Несмотря на свое промысловое значение, барсук относится к видам, вызывающим наименьшее беспокойство в плане охраны.

Обитая в непосредственной близости к человеку и являясь ценным объектом охоты, барсук представляет значительный интерес как хозяин различных паразитов, однако, количество подобных исследований на данный момент немногочисленно.

Материалы и методы. Исследование проведено осенью 2023 года на кафедре инфекционных болезней ФГБОУ ВО Пермский государственный аграрнотехнологический университет имени академика Д.Н. Прянишникова (ПГАТУ). В лабораторию паразитологии было доставлено два трупа барсуков, добытых охотниками на территории Пермского района Пермского края. Изучение паразитофауны проведено методом неполного гельминтологического вскрытия по К.И. Скрябину с обязательным изучением содержимого дыхательной и пищеварительной систем, а также компрессорной трихинеллоскопией.

Для просмотра препаратов использовали микроскоп фирмы Meiji (Japan) на малом (Х10) и среднем (Х40) увеличении объектива с выведением изображения на монитор персонального компьютера при помощи камеры Vision (Canada). Определение выявленных паразитов проводили по морфологическим признакам и описаниям, приведенным в отечественной и зарубежной литературе.

Результаты исследования и обсуждение. При исследовании одного из двух представленных для паразитологического исследования трупов паразитов обнаружено не было. При вскрытии второго трупа - самца барсука, добытого в Пермском районе, в тощей кишке были найдены нематоды длиной 0,7-0,8 см, белого цвета. Морфологические показатели данных гельминтов позволили определить их как Uncinaria criniformis (Goezе, 1782), которые на территории Пермского края описаны нами впервые.

Методом секвенирования ДНК у барсуков обнаружено шесть видов уницанарий [5], тогда как по морфологическим особенностям наиболее часто регистрируют два -

U. stenocephala и U.criniformis.

Кутикула гельминтов с нежной поперечной исчерченностью. Головной конец изогнут вентрально и снабжен воронковидной ротовой капсулой, сформированной пятью хитиновыми пластинками. Длина самцов варьирует от 5-до 7 мм, самок – 7-11 мм.

При микроскопии нематод нами установлено, что у самцов хвостовой отдел снабжен бурсой, которая состоит их трех лопастей. Имеются две равные нитевидные спикулы. По морфологии U.criniformis несколько меньше по размерам по сравнению с U.stenocephala, однако достоверными можно считать только различия в строении дорсального ребра хвостовой бурсы самца, а именно, у U.stenocephala оно разделено на три ветви, тогда как у U.сriniformis – на две [5], что позволило нам идентифицировать именно ее.

223

Этот вид кривоголовок характерен для куньих, особенно барсука в разных странах Европы с экстенсивностью инвазии от 59,2% в Ирландии [3], до 100% в Тоскане и Испании [6,7], однако отмечен и у лис [4].

Развитие унцинарий происходит прямым путем. Самки выделяют овальные яйца серого цвета с тонкой гладкой оболочкой, содержащие внутри бластомеры. При наличии благоприятных условий внутри яйца формируется личинка, которая выходит во внешнюю среду и дважды линяет, превращаясь в инвазионную L3, которая проникает в организм хозяина перорально или перкутанно, активно мигрируя через неповрежденную кожу. Взрослые унцинарии являются гематофагами, вызывая развитие хронической анемии [1, 2].

Рисунок 1 ‒ Хвостовой конец самца U. criniformis от барсука. Увел. ×400

Рисунок 2 ‒ Головной конец нематоды

U. criniformis от барсука. Увел. ×400

Сведений о патогенности U.criniformis в доступной литературе не отмечено. Выводы. Паразитофауна барсуков на территории Пермского края изучена не-

достаточно. По результатам паразитологического вскрытия трупа барсука нами по морфологическим характеристикам установлена инвазия нематодами U.criniformis, ко-

224

торая является характерным эндопаразитом куньих с широким распространением. Данная инвазия может негативно влиять на состояние здоровья животных, а, следовательно, на санитарные показатели продукции охотничьего промысла.

Список литературы

1.Нематодозы собак : (зоонозы и зооантропонозы) / Б. Ф. Шуляк, И. А. Архипов. - Мо-

сква : КонсоМед, 2010. - 495 с., [2] л. цв. ил. : ил., табл.; 22 см.; ISBN 978-5-7361-0126-9.

2.Паразитология и инвазионные болезни животных / М. Ш. Акбаев, Ф. И. Василевич, Р.М. Акбаев. - 3-е изд. , перераб. и доп. - Москва : КолосС, 2013. - 776с.

3.Byrne, R.L. The helminth parasites of Irish badgers: an untold story. A thesis submitted in fulfilment of the Degree of Master of Science to the University of Dublin / R.L. Byrne // Trinity College. − 2020. − 71р.

4.Morfologiczne i molekularne porównanie nicieni z rodzaju Uncinaria pasozytujacych u lisa

(Vulpes vulpes) i psa (Canis familiaris) [Molecular and morphological comparison of hookworms from genus Uncinaria invading red fox (Vulpes vulpes) and dog (Canis familiaris)]// Górski P, Radowańska A, Jaros D, Wiśniewski M.// Wiad Parazytol. − 2006. − № 52(4). − Р. 317-320. Polish. PMID: 17432625.

5.Morphological and molecular comparison of nematodes from the family Ancylostomatidae isolated from selected species of carnivorous mammals in central Poland. /Górski P., Długosz E., Bartosik J. [et al.]// Med. Weter. − 2023. − №79 (5). − Р. 223-226. DOI: dx.doi.org/10.21521/mw.6766.

6.Zoonotic Giardia duodenalis Genotypes and Other Gastrointestinal Parasites in a Badger Population Living in an Anthropized Area of Central Italy // Maestrini, M.; Berrilli, F.; Di Rosso, A.;

Coppola, F.; Guadano Procesi, I.; Mariacher, A.; Felicioli, A.; Perrucci, S.// Pathogens. – 2022.

−№ 11. − Р.906. DOI.org/10.3390/pathogens11080906.

7.Torres, J. Helminth parasites of the eurasian badger (Meles meles L.) / J. Torres, J. Miquel,

M. Motjé// in Spain: a biogeographic approach. Parasitol Res. − 2001. − №87. − Р.259–263 DOI.org/10.1007/s004360000316.

УДК 579.64:631

ИЗМЕНЕНИЕ МИКРОБИОТЫ КИШЕЧНИКА ТЕЛЯТ СИММЕНТАЛЬСКОЙ ПОРОДЫ ПОД ВЛИЯНИЕМ ПРОБИОТИЧЕСКИХ ПРЕПАРАТОВ

И.М. Хайрова

ФГБОУ ВО Уральский государственный аграрный университет, г. Екатеринбург, Россия

E-mail: khairova70@mail.ru

Аннотация. В статье рассматриваются полученные результаты исследования микрофлоры кишечника новорожденных телят симментальской породы, методом 16S метагеномного анализа до и после введении пробиотиков. В составе микробного профиля кишечника телят в возрасте 2-5 дней, до применения пробиотиков, превалируют бактерии рода Bifidobacterium. Из условнопатогенных – Clostridium, Serratia, Enterococcus. По результатам исследования был сделан вывод, что при применении пробиотических препаратов в 1-й и 2-й группе телят наблюдается усиление роста эндогенной микрофлоры, за счет чего происходит подавление роста патогенной микрофлоры в кишечнике животного. В контрольной группе телят вырастает процент патогенной мик-

рофлоры, в частности- Enterobaсter, Erysipelothrix, Tolumonas и Salmonella.

225

Ключевые слова: телята, симментальская порода, микробиота кишечника, пробиотические препараты, метагеномный анализ.

Введение. Изучение микробиоты кишечника является новым направлением в современной ветеринарии [1]. При помощи метагеномного анализа можно выявить не только точный процент состава микроорганизмов, их функции и метаболические связи, но и выявить некультивируемые микроорганизмы [2]. Этот метод позволяет установить на раннем этапе заболевания и корректировать их, прослеживая изменения микрофлоры кишечника животного во время лечения [4]. У здорового новорожденного теленка в норме микробиота кишечника имеет несколько сотен разных видов микроорганизмов и формирует иммунитет животного путем подавления патогенной микрофлоры [5,6]. Пробиотики усиливают рост эндогенной микрофлоры и, как правило, воздействуют на микробиом кишечника и функциональное состояние организма животного [3].

Цель работы ‒ выявить методом метагеномного анализа опытную группу телят, наиболее устойчивую к патогенным агентам, в зависимости от получаемого пробиотика.

Задачи: 1) провести метагеномный анализ микробиоты кишечника новорожденных телят симментальской породы до и после применения пробиотиков; 2) изучить микрофлору новорожденных телят симментальской породы.

Материалы и методы. Исследования проводились на телятах симментальской породы в ТОО Карасуского района Костанайской области, Республики Казахстан, в возрасте 2-5 дней и до 30 дней. Исследованию подверглось содержимое прямой кишки новорожденных телят. Метагеномный анализ был проведен в г. Алматы, Республике Казахстан в лаборатории химических и молекулярно-генетических методов исследований ТОО «НПЦ микробиологии и вирусологии». Из полученного ДНК, при помощи ПЦР амплифицировали фрагмент 16S rRNA гена. Концентрацию продукта определяли на биоанализаторе Agilent 2100. Полученные библиотеки были нормализированы до концентрации 4 nМ и объединены в общий пул. Реакцию cеквенирования осуществляли с помощью программного обеспечения MiSeq™ Control Software v2.6. Таксономическая идентификация микроорганизмов проводилась путем анализа V3 и V4 регионов 16S rRNA гена бактерий в Международной базе данных Greengenes Database Lawrence Berkeley National Laboratory (LBNL, США).

Результаты исследования. В опыте участвовали новорожденные телята в возрасте 2-5 дней, в количестве 60 голов, по 10 голов в каждой группе. Группы создавали по мере рождаемости телят и согласно «аналогам». В 1-ой опытной группе, телятам, согласно инструкции, орально вводили 50 мг/кг пробиотический препарат «Ветом 1.1», 1 раз в сутки в течение 7 дней. Во 2-ой опытной группе телята получали 1 раз в сутки орально 30 мг монокомпонентный препарат на основе Escherichia coli, штамм М-17, в течение 7 дней. Контрольной стала 3-я опытная группа, в которой телята не получали пробиотиков.

На первом этапе исследования мы отправили содержимое кишечника новорожденных телят в возрасте от 2 до 5 дней на метагеномный анализ. Результат представлен на (рис. 1).

Микробный профиль бактериального сообщества кишечника телят представлен следующими бактериальными родами: Bifidobacterium-33,81%, Lactobacillus-24,05%, Strep- tococcus-9,18%, Other Genera-4,52%, Escherichia-2,21%, Serratia-2,05%, Pediococcus-1,93%, Enterococcus-1,45%, Collinsella-1,35%, Bacteroides-1,34%, Clostridium-1,14%, Blautia-

226

1,02%, Bulleidia-0,84%, Dorea-0,79%, Mesoplasma-0,64%, Sharpea-0,57%, Slackia-0,43%,

Fructobacillus-0,34%, Ruminococcus- 0,34%, Erysipelothrix-0,29%, Kocuria-0,3%.

Рисунок 1 ‒ Микробиота кишечника телят симментальской породы

ввозрасте 2-5 дней

вТОО Карасуского района Костанайской области на уровне Genus

Наибольшее число колоний составляет Bifidobacterium и Lactobacillus. К услов-

но – патогенным можно отнести: Clostridium, Serratia, Enterococcus.

Затем, согласно схеме, описанной выше, мы задавали опытным группам телят пробиотики. На 30-й день, после применения пробиотических препаратов, мы повторно отправили биопробы контрольной и опытных групп на исследование. На рис. 2, представлены полученные результаты микробиоты кишечника телят из контрольной группы, которая не получала пробиотические препараты.

Рисунок 2 ‒ Микробиота кишечника телят симментальской породы в ТОО Карасуского района Костанайской области на уровне Genus контрольная группа телят в возрасте 30 дней

На данном этапе мы видим, что появляются семейства: Desulfonauticus, Clostridium caenicola, Alkaliphilus, Рseudobuturivibrio, Oscillospira, Pedobacter Bacteroides. Ко-

личественно увеличиваются бактерии рода: Blautia на 7,03% (8,05%). Dorea на

1,44%(2,23%) Erysipelothrix muris-на 1,32%(1,6%). Sharpea на 0,65%(1,22%). Исчезают Bifidobacterium, Escherichia, Enterococcus, Streptococcus, Collinsella, Fructobacillus pseudoficulneus. Снижается уровень Lactobacillus на 20,74% и составляет (3,31%) по сравнению с 1-м фоновым метагеномным анализом. Возрастает процент условно-

227

патогенных бактерий: Enterobaсter - 2,23%, (Enterobaсter amnigenus приводит к изменению проницаемости стенок кишечника), Erysipelothrix на 1,31%, Tolumonas отно-

сится к типу Pseudomonadota (Proteobacteria) и составляет 0,33%. Появляются Gemella

0,3% и Salmonella 0,85%. Анализируя данные, можно сказать, что телята 3-ей контрольной группы в возрасте 30 дней являются клинически больными.

Рассмотрим на (рис. 3) микробный профиль бактериального состава кишечника телят ТОО Карасуского района, 1 опытной группы (B. sub.) в возрасте 30 дней.

Рисунок 3 ‒ Микробиота кишечника телят симментальской породы в ТОО Карасуского района Костанайской области на уровне Genus, 1-я опытная группа (B. sub.) телят в возрасте 30 дней

Опытная группа, получавшая пробиотик «Ветом 1.1», имеют микрофлору в 30дневном возрасте в составе, которого появляется Bacillus-0,37%, Bifidobacterium- 3,17%, Ruminococcus- 5,05%, появляется Lactobacillus – 0,31%, Lactococcus – 1,06%, dorea- 0,3%. Семейство Clostridiacece составило в общем проценте – 14,7% из них по видам: Clostridium alcalicelulosi – 2,23%, Clostridium caenicola – 0,44% и Clostridium thermosuccinogenes - 0,27%. Не являются патогенными микроорганизмами. Повышается Blautia – 5,37%. Анализ данных показал, что при приеме «Ветом1.1», в возрасте 30 дней в микрофлоре кишечника телят отсутствуют патогенные бактерии.

Рассмотрим на рис. 4 микробиоту кишечника телят 2-й опытной группы телят (E.coli) в возрасте 30 дней ТОО Карасуского р-на.

Рисунок 4 ‒ Микробиота кишечника телят симментальской породы в ТОО Карасуского района Костанайской области на уровне Genus, 2-я опытная группа (E. coli) телят в возрасте 30 дней

228

Телята 2-й опытной группы, получавшие пробиотический препарат E. coli, штамм М- 17, в возрасте 30 дней имеют следующий бактериальный профиль:

Bifidobacterium-11,63%, Ruminococcus- 1,05%, Desulfonauticus – 2,45%, Blautia – 3,96%, Clostridium – 4,66%, Alkaliphimus -3,16%, Pedobacter-1,2%, Oscillospira- 1,46%, Erysipelothrix-0,62%, Sharpea- 3,16%, Thermodesulfovibrio-0,61%, Slackia – 2,74%, Thermicanus- 1,45%, Bacteroides- 2,1%, Parabacteroides- 0,93%. Анализ полученного ре-

зультата показывает, что в микробиоте 2-й опытной группы (E.coli) не выявлены семейства Enterobaсteriaceae, телята клинически здоровы.

Выводы и предложения. В составе микробного профиля кишечника телят в возрасте 2-5 дней, до применения пробиотиков, превалируют бактерии рода

Bifidobacterium. Из условно-патогенных – Clostridium, Serratia, Enterococcus. Исходя из полученных опытным путем данных, можно сделать вывод, что при применении пробиотических препаратов в 1-ой и 2-ой группе телят наблюдается усиление роста эндогенной микрофлоры, за счет чего происходит подавление роста патогенной микрофлоры в кишечнике животного. В контрольной группе телят вырастает процент патоген-

ной микрофлоры, в частности- Enterobaсter, Erysipelothrix, Tolumonas и Salmonella.

Список литературы

1. Барко, П.С. Желудочно-кишечный микробиом / Барко П.С., Мак Майкл М.йМ.А., Суонсон К.С., Уильямс Д.А.// Обзор . J.Vet.Intern.Med.2018 ;32(1): 9 - 25 дои: https: // doi. org / 10. 1111 / jvim. 14875 . [Перекрестная ссылка] , [PubMed] , [Web of Science®], [Google ученый].

2.Даугалиева, А.Т. Сравнительная характеристика кишечного микробиома местного крупного рогатого скота и скота абердин-ангусской породы, импортированного в Казахстан/ А. Т. Даугалиева, С. Т. Даугалиева, М. А. Кинеев, Б. С. Арынгазиев, А. И. Сембаева, Т. А. Лаврентьева//Ветеринария сегодня. Научный журнал. – 2022. − Т. 11, № 1.

3.Эленшлегер, А. А. Влияние пробиотического препарата "Ветом 2" на клиникобиохимический статус телят / А. А. Эленшлегер, А. В. Требухов // Вестник Омского государственного аграрного университета. – 2019. – № 2(34). – С. 139-145.

4.Wooley, J.K. Textbook on metagenomics / J. K. Wooley, A. Godzik, I. Friedberg//Computational biology PLoS. 2010 Vol. 6, № 2. Е1000667.

5.Annabelle, Beaver. Differences in the faecal microbiota of dairy calves reared with different milk sources and levels of maternal contact/ Annabelle Beaver, Charis Petersen, Daniel M. Weary, B. Brett Finlay, Marina A.G., Von Keyserlingk// J D S summary of studies in Health, Behavior and Wellbeing . − 2021. − vol. 2, iss. 4. − Р. 200-206, July 01.

6.Hassan, Zafar. Bacteroides in Health and Disease Species / Z. Hassan, H. Milton, Syer // Gut Microbes. − 2021. − Vol. 13, Iss. 1 [Electronic.resource]: //https://doi.org/10.1080/ 19490976.2020.1848158 (accessed 03.05.2023).

УДК 616:616-073.75:004.383.3

АЛГОРИТМ ПОСТОБРАБОТКИ В ЦИФРОВОЙ РЕНТГЕНОГРАФИИ

Ю.А. Шумилин

ФГБОУ ВО Воронежский ГАУ, г. Воронеж, Россия

E-mail: shumilin80@mail.ru

Аннотация. Качественно выполненная рентгенограмма и постобработка снимков, проведенная по предложенному нами алгоритму, позволяет: улучшить качество

229

диагностического процесса и уменьшить количество повторных экспозиций, а значит снизить дозу облучения на персонал рентгеновского кабинета и пациента. Применение на практике всех опций постобработки рентгеновского снимка: инверсия негативного изображения, коррекция резкости, масштабирование, коррекция яркости и контрастности значительно расширяют возможности диагностического применения рентгенографии в ветеринарии, как при работе с крупными животными, так и с мелкими.

Ключевые слова: цифровая рентгенография, мобильная рентгенография, детектор плоскопанельный, постобработка рентгенограмм.

Введение. Существенными недостатками пленочной рентгенографии (аналоговой) являлись: статичность получаемого изображения и малый динамический диапазон. Снимки могли быть выполнены в стандартных режимах: обычный, более мягкий или более жесткий и, следовательно, они могли отражать только определенные структуры органов. При анализе пленочной рентгенограммы отсутствовала возможность повлиять на качество полученного изображения, в этом и заключалась его статичность. Так как параметры съемки необходимо подбирать в соответствии с плотностью и конституцией снимаемого объекта, его толщины, то из-за разнообразия видового и породного состава животных поступающих на прием в ветеринарную клинику, вероятность «не угадать» с параметрами экспозиции была достаточно высока. Это требовало повторной съемки и дополнительного облучения пациентов.

Переход на плоскопанельные цифровые детекторы позволил внедрить постобработку рентгенограмм, что значительно улучшило качество диагностики. Однако, методические особенности анализа рентгеновских цифровых изображений разработаны не достаточно и многие практикующие врачи используют постобработку снимков не в полной мере, поэтому наша работа является особенно актуальной.

Материал и методы. Работа выполнена в условиях кафедры терапии и фармакологии на факультете ветеринарной медицины и технологии животноводства Воронежского ГАУ, на животных, поступающих на прием в ветеринарную клинику. Рентгенограммы получали на рентгеновском аппарате DIG-360 и на цифровом плоскопанельном рентгеновском детекторе Carestream DRX CORE 3543. Рентгенографию проводили в нескольких доступных проекциях. Параметры экспозиции подбирались в зависимости от толщины исследуемого объекта, его плотности и конституции. Исследования проводили в плановом режиме.

Результаты исследований. Цифровые рентгенограммы имеют большой динамический диапазон, что по определению характерно для многих цифровых изображений. В нашей практике мы используем дублирование полученной рентгенограммы, каждую их которые можно обработать по-разному и сохранить. Иногда, в зависимости от целей, мы получаем три и более дубликата, на которых, изменяя ширину диапазона плотностей, решаем разные диагностические задачи. Это позволяет хорошо проработать мягкотканные структуры, кости или внутренние органы.

Одна из первых возможностей, которую даёт программа постобработки, является инверсия негативного изображения в позитивное. Однако, проанализировав данные литературных источников [2, 3, 5, 6] и руководствуясь собственным опытом, мы предпочитаем оценивать негативное изображение, как и 98% остальных врачей. В ветеринарной литературе нам встретились работы только одного автора [5], который предпочитает позитивное рентгеновское изображение. Мы считаем, что использование пози-

230