Добавил:
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

Ильина Г.В., Ильин Д.Ю. Ксилотрофные базидиомицеты в чистой культуре

.pdf
Скачиваний:
102
Добавлен:
11.09.2020
Размер:
2.98 Mб
Скачать

Достоверно различающиеся варианты опыта на основании названного теста были сгруппированы (отдельно по каждому штамму). Варианты, составляющие группу «а», в ее пределах различаются несущественно, но имеют отличия от группы, не имеющей буквенного обозначения (минимальное значение, чаще

– контроль). Варианты, маркированные «b» - имеют максимальные значения, достоверно отличные от группы «а» и контроля.

На общем фоне вновь прослеживается тенденция, отмеченная нами ранее: быстрорастущие культуры реагируют на внесение селеновых добавок наиболее позитивно, что заметно по стимуляции скорости роста в опытных вариантах в сравнении с контролем. Субъективно заметная, но, как свидетельствуют результаты статистической обработки, не всегда достоверная стимуляция отмечена для медленнорастущих культур в опытах с селенатом натрия. Опыты показывают, что эта часть культур наилучшим образом реагирует на внесение селена в органической форме. Полученные на основе теста Дункана группировки распределяются таким образом, что виды, склонные к паразитной трофике в природных условиях, обнаруживают факты стимуляции органической формой селена, а обладающие сапротрофной трофикой – неорганической. Для объяснения факта стимуляции роста мицелия следует обратиться к рассмотрению динамики развития культур в контрольных и опытных вариантах (рис. 17 а, б, в).

На примере наиболее ярких представителей изученных трофических группировок (облигатные паразиты S. crispa, H. annosum; представители факультативных паразитов I. obliquus, F. hepatica; факультативных сапротрофов – F. pinicola, G. applanatum) показаны особенности их развития на питательных средах, обогащенных соединениями селена Подобные закономерности установлены и для прочих видов с аналогичными стратегиями.

110

а)

б)

в)

 

 

13

,

 

12

роста

 

10

 

 

11

скорости

сут/мм

9

8

 

 

 

 

7

 

 

6

Средние

 

5

 

4

 

 

 

 

3

2

1

0

0

3

6

9

12

15

Сутки культивирования

,

 

14

роста

 

 

13

 

 

 

 

12

скорости

сут/мм

11

10

 

 

 

 

9

 

 

8

 

 

7

 

 

6

Средние

 

5

 

0

 

 

4

3

2

1

0 3 6 9 12 15

 

 

13

 

 

Сутки культивирования

 

 

 

 

 

 

 

 

,

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

роста

 

12

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

11

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

скорости

 

10

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

сут/мм

9

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

8

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

7

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

6

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Средние

 

5

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

4

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

3

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

2

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

1

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

0

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

0

3

6

9

 

 

 

 

 

12

15

 

 

 

 

 

 

 

Сутки культивирования

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

S. crispa, штамм АИ-10

 

 

 

H. annosum, штамм Han-1

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

I. obliquus, штамм IO-2

 

 

 

 

 

F. hepatica, штамм Fh-1а

 

 

 

 

 

F.pinicola, штамм Fpi-1

 

 

 

 

 

G. applanatum, штамм G-3

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Рисунок 17 – Динамика развития культур грибов (КГА, 26ºС, повторность трехкратная): а) в контрольных вариантах; б на средах, обогащенных селенатом натрия; в) на средах, обогащенных селенопираном

111

Анализ полученных данных показывает, что общей тенденцией культур, развивающихся в присутствии соединений селена, является более ранний переход в фазе стационарного роста, при этом отмечается сокращение фазы адаптации (что особенно заметно на примере медленнорастущих культур облигатных паразитов), и некоторое сокращение фазы логарафмического роста.

Фаза стационарного роста она несколько растягивается во времени и стабилизируется. У большинства изученных штаммов показатели темпов роста в этот период увеличиваются, по сравнению с контролем, незначительно. Эффект синхронизации развития культуры на примере микромицетов – продуцентов антибиотиков отмечался нами ранее и описан в ряде работ (Ильина и др., 2000; Ильин и др., 2001). Возможно, в данном случае обнаруживается результат действия подобного механизма: нивелируются факторы окислительного стресса, провоцирующие старение культуры.

Интересным аспектом представляется и позитивное воздействие, как выяснилось, в большей степени обеспечиваемое органическим соединением селена, на развитие в искусственной культуре штаммов облигатных паразитов. В данном случае нам представляется вероятным частичное снятие окислительного и трофического стресса, который в большей или меньшей степени неминуемо развивается у паразитов ex situ. В случае, если данные косвенные предположения верны, целесообразно исследование биохимических маркеров окислительного стресса в мицелии, что особенно актуально при хранении культуры.

Обнаруженные факты позволяют рекомендовать ряд компонентов питательных сред (парааминобензойная кислота, селенат натрия, 9-фенил-симметричный-октагидроселено-ксантен), которые целесообразно использовать при культивировании изолятов ксилотрофных базидиомицетов различных трофических стратегий в условиях чистой культуры.

112

Глава 4 ВОЗМОЖНОСТИ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ СОЕДИНЕНИЙ СЕЛЕНА ПРИ ХРАНЕНИИ КОЛЛЕКЦИОННЫХ КУЛЬТУР КСИЛОТРОФНЫХ

БАЗИДИОМИЦЕТОВ

Проблема сохранения морфолого-физиологических характеристик культуры микроорганизма и его продуктивных свойств в ходе длительного хранения была и остается одной из самых актуальных проблем биотехнологии. Промышленные регламенты работы с продуцентами допускают хранение культуры без пересева в течение четырех-шести месяцев. Нами в течение длительного (15-летнего) периода проведена оценка эффективности различных способов хранения культур макромицетов (Денисова (Ильи-

на), 1997, 1999; Ильина, 2001).

Традиционно наиболее распространенным способом поддержания исходной культуры гриба является высев мицелия в пробирки на скошенные агаризированные среды с оптимальным для каждого штамма составом и выращивание его до определенного возраста в оптимальных условиях. Готовую культуру в пробирках помещают в холодильник и хранят при температуре 3-4 °С. Пересевы культур проводят через определенные промежутки времени с таким расчетом, чтобы наилучшим образом сохранить физиолого-биохимические свойства штамма. Для длительного хранения некоторых штаммов рекомендуется использовать бедные сахарами крахмальные среды.

В крупных коллекциях грибные культуры успешно хранят в замороженном состоянии в атмосфере жидкого азота при температурах -165-196 °С; в лиофилизированном состоянии; под слоем вазелинового или минерального масла (Промышленная микробиология…, 1989).

Такие подходы, к сожалению, не всегда подходят для хранения культур высших грибов, а также теряют свою актуальность и возможность реализации в большинстве учебных и научных коллекций, имеющихся в регионах России. При этом известно, что ни один из многочисленных способов хранения живых культур микроорганизмов не дает полной гарантии стабильности штамма и сохранения его продуктивности. С другой стороны, при частых пересевах культуры нередко изменяют физиологические пара-

113

метры, теряют способность к выработке целевых продуктов или снижают ее. Среди прочих причин это обусловлено спонтанной диссоциацией штаммов, инициируемой окислительными стрессами, являющимися обязательным последствием процессов многократного пересева.

Обнаруженные нами ранее аспекты влияния на развитие культур ксилотрофных базидиомицетов со стороны соединений селена определили целесообразность проведения данной серии исследований. Изученные соединения вносили в агаризованные питательные среды, предназначенные для хранения мицелиальных культур (КГА). Объектом настоящих исследований стали виды, занесенные в Красную Книгу Пензенской области

(Ganoderma lucidum и Sparassis crispa), сохранение культур кото-

рых имеет особое значение. Ниже представлены данные, полученные в результате наблюдения за первым из названных видов в условиях на примере сохраняющейся культуры наиболее продуктивного штамма. Аналогичные результаты получены для других штаммов. Второй из названных видов представлен в коллекции одним штаммом.

В питательную среду, предназначенную для хранения мицелиальных культур, вносили растворы селената натрия (Na2SeO4) (первый вариант опыта) или 9-фенил-симметричного- октагидроселеноксантена (селенопиран, СП-1) (второй вариант опыта), с конечной концентрацией в пересчете на селен 10-4-10-6 г/л. В контрольные варианты вносили адекватное количество растворителя. Культуры хранили при температуре обычной холодильной камеры (4ºС).

Результаты опытов, близкие для трех изученных штаммов G. lucidum, на примере наиболее продуктивного (склонного к плодоношению) штамма Gl-1, свидетельствуют, что соединения селена способствуют сохранению физиологических параметров хранящейся культуры в течение длительного времени (до 18-24 месяцев) без пересева (табл. 6).

114

Таблица 6 – Влияние соединений селена на физиологобиохимические параметры мицелия G. lucidum (штамм Gl-1) при хранении

Варианты опыта,

 

Показатели

 

период хранения

Средняя

Базофилия

Оксидаз-

Способ-

 

 

 

 

скорость

протоплаз-

ная актив-

ность к

 

 

 

 

роста,

мы, баллы

ность,

формиро-

 

 

 

 

мм/сут

 

ед.опт.пл·

ванию те-

 

 

 

 

 

 

100/г·сек

леоморфы

 

 

До

начала

9,60±0,10

5

0,58±0,02

Имеется

 

 

хранения

 

 

 

 

 

 

3 месяца

7,39±0,08

4

0,61±0,02

Имеется

 

 

6 месяцев

2,60±0,03

4

0,26±0,01

Имеется

 

 

9 месяцев

1,03±0,12

3

0,15±0,01

Имеется

Контроль

 

12

месяцев

-

2

-

-

 

18

месяцев

-

1

-

-

 

24

месяца

-

0

-

-

 

30

месяцев

-

-

-

-

 

36

месяцев

-

-

-

-

 

 

натрия

 

До

начала

9,60±0,10

-

0,58±0,02

Имеется

 

хранения

 

 

 

 

 

3 месяца

9,51±0,12

5

0,77±0,04

Имеется

 

 

селенат

 

6 месяцев

9,57±0,03

5

0,60±0,06

Имеется

Se)

9 месяцев

9,50±0,04

4

0,51±0,01

Имеется

12 месяцев

9,50±0,10

4

0,43±0,19

Имеется

+ по

 

 

 

 

 

 

18

месяцев

8,90±0,10

4

0,40±0,12

Имеется

 

л

24

месяца

5,60±0,10

3

0,28±0,03

-

КГА

г/

 

 

 

 

 

 

4

30

месяцев

-

-

-

-

(10-

36 месяцев

-

-

-

-

 

 

До

начала

9,60±0,10

5

0,58±0,02

Имеется

 

 

хранения

 

 

 

 

селенопиран

 

3 месяца

9,40±0,12

5

0,51±0,16

Имеется

л по Se)

6 месяцев

9,32±0,09

5

0,49±0,01

Имеется

9 месяцев

9,30±0,06

5

0,49±0,12

Имеется

12

месяцев

9,22±0,20

5

0,40±0,12

Имеется

18 месяцев

6,16±0,09

4

0,39±0,11

Имеется

+

г/

 

 

 

 

 

 

24

месяца

1,60±0,06

2

0,18±0,06

-

КГА

4

(10-

30

месяцев

-

-

-

-

36

месяцев

-

-

-

-

 

 

115

По истечению этого периода отмечаются характерные изменения, которые определяются при помощи ряда морфологических и биохимических маркерных показателей: скорость роста, степень базофилии протоплазмы (субъективный, балльный показатель, методика расчета приведена в главе «Материалы и методы исследования»), оксидазная активность культуры на лигнинсодержащем материале.

В опытных вариантах и в контроле культуры сохранили способность к прорастанию в обычные сроки (в течение 3 и 6 месяцев). После 3 месяцев хранения культуры в контроле скорость роста мицелия достоверно снизилась, что объясняется, прежде всего, увеличением периода адаптации. После хранения культуры свыше 6 месяцев в контрольном варианте ферментативная активность мицелия последовательно угасает. После 12 месяцев хранения такие культуры не брались в опыт по причине того, что посевной материал практически утратил способность к прорастанию.

Имеющийся в коллекции штамм S. crispa не проявляет склонности к образованию телеоморфы на традиционных питательных средах в условиях чистой культуры. Для него характерны относительно низкие скорости роста на КГА (контроль), относительно невысокие показатели оксидазной активности. Проведено изучение возможностей увеличения сроков хранения культуры, при помощи внесения в среду соединений селена (табл. 7).

Возможно, вследствие облигатно паразитической стратегии в природе, штамм S. crispa быстро утрачивает способность кнормальному развитию, испытывая стресс в условиях чистой культуры. Существуют предположения, что вне зависимости от относительно низких скоростей роста, энергетические затраты организма в условиях стресса, довольно велики (Костычев, 2009).

116

Таблица 7 – Влияние соединений селена на физиологобиохимические параметры мицелия S. crispa (штамм АI-10) при хранении

Варианты опыта,

Показатели

 

 

период хранения

Средняя

Базофилия

Оксидазная

 

 

 

скорость

протоплаз-

активность,

 

 

 

роста,

мы, баллы

ед.опт.пл·100/

 

 

 

мм/сут

 

г·сек

Конт-

До начала хранения

0,62±0,03

4

0,13±0,02

роль

3

месяца

0,44±0,03

3

0,10±0,01

 

6

месяцев

0,05±0,03

1

-

 

9

месяцев

0,01±0,03

1

-

 

12 месяцев

-

-

-

 

18 месяцев

-

-

-

 

 

 

 

 

КГА +

До начала хранения

0,62±0,03

4

0,13±0,02

селенат

3

месяца

0,60±0,03

4

0,14±0,07

натрия

6

месяцев

0,55±0,03

2

0,09±0,06

(10-4 г/л

9

месяцев

0,38±0,03

2

-

по Se)

12 месяцев

0,02±0,03

2

-

 

 

 

 

 

 

18 месяцев

-

-

-

 

 

 

 

 

КГА +

До начала хранения

0,62±0,03

4

0,13±0,02

селено-

3

месяца

0,77±0,03

5

0,14±0,01

пиран

6

месяцев

0,60±0,03

4

0,09±0,01

(10-4 г/л

9

месяцев

0,42±0,03

4

0,07±0,04

по Se)

12 месяцев

0,38±0,03

2

-

 

18 месяцев

0,35±0,03

2

-

Возможно, вследствие облигатно паразитической стратегии в природе, штамм S. crispa быстро утрачивает способность к нормальному развитию, испытывая стресс в условиях чистой культуры. Существуют предположения, что вне зависимости от относительно низких скоростей роста, энергетические затраты организма в условиях стресса, довольно велики (Костычев, 2009). Это, безусловно, определяет некоторое смещение баланса в обменных процессах в ущерб процессам ассимиляции, при одновременной интенсификации образования продуктов перекисного окисления липидов (ПОЛ).

117

Соединения селена, вероятно, стабилизируют протекание обменных процессов в мицелии и, в определенной степени, нивелируют негативное влияние свободных радикалов. Данное предположение нашло подтверждение при определении содержания в мицелии хранящихся культур биохимического маркера окислительного стресса – малонового диальдегида (МДА).

Предварительно, до начала хранения, были изучены особенности жирнокислотного состава мицелия штаммов G. lucidum и S. crispa. Установлены некоторые отличия между штаммами первого вида, второй вид представлен в коллекции одним штаммом. Статистическая оценка выявила достоверность отличий между штаммами G. lucidum лишь по двум из двенадцати идентифицированных жирных кислот, а межвидовые отличия показаны по всем установленным жирным кислотам (табл. 8).

Таблица 8 – Общий жирнокислотный состав мицелия штаммов

G. lucidum и S. crispa (р<0,05, повторность трех-

кратная)

Жирная ки-

 

Содержание, % от сухой массы мицелия

слота

 

 

G. lucidum

 

S. crispa

 

Gl-1

 

Gl-3

Gl-6

AI-10

С 14:0

0,014

 

0,017

0,018

-

С 15:0

0,015

 

0,026

0,016

-

С 16:0

0,134

 

0,170

0,216

0,354

С 16:0 (2-ОН)

0,007

 

0,001

0,001

-

С 16:1

0,011

 

0,009

0,015

0,013

С 18:0

0,065

 

0,055

0,045

0,033

С 18:1

0,075

 

0,094

0,086

0,028

С 18:2

0,189

 

0,155

0,140

0,299

С 18:3

0,004

 

0,001

0,001

0,015

С 20:1

0,007

 

0,005

0,011

-

С 22:0

0,001

 

-

0,001

-

С 24:0

0,012

 

0,009

0,031

-

При оценке полученных данных во всех образцах отмечено преобладание ненасыщенных жирных кислот (моноеновых, диеновых). Помимо тривиальных компонентов, изомеров, во всех образцах обнаружено небольшое количество высококипящих

118

компонентов, по всей видимости, не являющихся высшими жирными кислотами. Представительство непредельных жирных кислот свидетельствует о существовании своеобразного ресурса для образования малонового диальдагида при активизации окислительных процессов в мицелии. Уровень МДА определяли в мицелии изученных видов на этапе адаптации к субстрату, в фазу логарифмического роста культур, а затем на разных сроках хранения мицелия. В опыте установлено неоднозначное содержание МДА, установленное для разных штаммов изученных видов на разных этапах роста (табл. 9).

Таблица 9 – Содержание малонового диальдегида в мицелии штаммов G. lucidum и S. crispa на стадии активного роста и после продолжительного хранения при температуре 4°С (нмоль/г)

Время развития ми-

 

 

Виды, штаммы

 

целия с момента ино-

 

 

G. lucidum

 

S. crispa

куляции

 

Gl-1

Gl-3

 

Gl-6

AI-10

трое суток

 

88,6±2,14

102,1±1,22

 

94,5±2,05

123,4±3,24

(фаза адаптации)

 

 

 

 

 

 

пять суток

 

64,6±1,96

80,5±2,04

 

85,1±4,43

112,7±5,96

(фаза логарифмиче-

 

 

 

 

 

 

ского роста)

 

 

 

 

 

 

семь суток

 

59,9±2,55

75,9±4,37

 

82,1±3,29

88,4±1,90

(фаза стационарного

 

 

 

 

 

 

роста)

 

 

 

 

 

 

девять суток

 

60,1±2,81

87,8±3,47

 

90,2±4,75

84,2±3,77

(фаза стационарного

 

 

 

 

 

 

роста)

 

 

 

 

 

 

 

 

 

После хранения в течение:

 

3 месяцев

 

40,8±1,80

51,2±6,38

 

141,9±4,75

77,8±6,12

6 месяцев

 

93,8±7,24

84,9±8,23

 

210, 5±5,79

126,9±4,38

9 месяцев

 

115,9±3,53

171,5±4,59

 

262,3±1,75

162,5±5,30

12 месяцев

 

148,1±4,57

214,0±6,57

 

105,2±2,72

147,9±5,84

18 месяцев

 

107,8±4,08

177,6±5,47

 

104,2±1,78

-

24 месяцев

 

91,2±2,54

168,1±3,21

 

100,6±3,33

-

Отмечено, что фаза адаптации, в период которой рост мицелия замедлен, уровень МДА находится на довольно высоком

119