Добавил:
Upload Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:
Etalony_otvetov_k_biletam_MKLI (5).doc
Скачиваний:
5
Добавлен:
09.09.2019
Размер:
174.59 Кб
Скачать

Билет № 16.

  1. В мокроте больного бронхиальной астмой были обнаружены спирали Куршмана. Спирали Куршмана - уплотненные закрученные в спираль. Образования из слизи. Наружная, рыхлая часть называется мантией, внутренняя, плотно закрученная часть - центральной осевой нитью.Изредка обнаруживаются отдельно только тонкие центральные нити без мантии и отдельно извитые волокна без центральной нити. Спирали Куршмана рассматриваются под малым увеличением микроскопа. При исследовании под большим увеличением по периферии спиралей можно увидеть лейкоциты, кристаллы Шарко- Лейдена. Эозинофилы - являются наиболее постоянным симптомом при бронхиальной астме. Эозинофилы относятся к лейкоцитам. Дифференцирование представляет трудности, но в окрашенных препаратах клетки сравнительно легко различаются. Эозинофилы выделяются своим темноватым оттенком, и при внимательном рассмотрении в них видна крупная зернистость, заполняющая всю клетку.

  2. Плоский эпителий диагностического значения не имеет. Это сгущенный эпителий слизистой оболочки ротовой полости, носоглотки, подгортанника и голосовых связок. Плоский эпителий имеет вид плоских тонких с небольшим пикнотическим пузырчатым ядром и гомогенной цитоплазмой. Одиночные клетки плоского эпителия встречаются всегда, в большом количестве - при примеси слюны или воспалительных процессах в ротовой полости.

  3. Важно помнить о правилах сбора мокроты для исследования. Мокроту собирают после тщательного полоскания рта и горла в чистую, сухую посуду, с закручивающейся крышкой, в утренние часы (лучше до приема пищи). Собирать мокроту за сутки и больше нецелесообразно, т.к. длительное стояние ведет к размножению флоры и аутолизу клеточных элементов. При необходимости мокроту сохраняют в прохладном месте (в холодильнике).

  4. Работать необходимо в средствах индивидуальной защиты в вытяжном шкафу. Весь металлический инструментарий дезинфицируется обжиганием. Все инструменты и мокрота обеззараживаются хлорсодержащими препаратами.

Билет № 17.

  1. Такой цвет появляется при отсутствии НС1 или дефиците соляной кислоты. К 5 мл профильтрованного желудочного сока добавляют 1 каплю диметиламидоазобензола (в присутствии соляной кислоты цвет желтый) и титруют до получения цвета «семги» 0,1 N НС1.

  2. В состав желудочного сока входит соляная кислота. Виды кислотности: Свободная соляная кислота 36 ммоль/л, связанная соляная кислота 13 ммоль/л, кислотный остаток 4 ммоль/л, также входит пепсин, слизь, муцин, биологические вещества, щелочный компонент.

  3. Метод Михаэлиса, метод Тепфера

1 % р-р спиртовой фенолфталеина, для определения общей кислотности. 0,5 % спиртовой р-р деметиламидоабензола, для определения концентрации свободной соляной кислоты.

1 % водный р-р ализоринсульфонового кислого натрия, для определения концентрации связанной соляной кислоты.

На 1000 мл д. Н20 - 4г NaOH

г-экв NaOH = (23+16+1)/1=40 0,1 г = 40/0,1=4г

или из фиксанала.

  1. Работать необходимо в средствах индивидуальной защиты, на специальных подносах. Весь использованный инструментарий, отработанный материал подлежат дезинфекции, стерилизации и дальнейшей утилизации.

    Билет 18.

  1. В норме общая кислотность – 40-60 ммоль/л, свободная кислотность -20-40 ммоль/л, связанная кислотность - 10-15 ммоль/л. Не соответствует в норме общая кислотность и свободная кислотность желудочного сока, что наблюдается при гиперацидном гастрите, язве 12-ти перстной кишки и язве желудка.

  2. Для определения общей кислотности пользуется фенолфталеин. В кислой и нейтральной среде он бесцветен, в щелочной приобретает малиновый цвет. Фенолфталеин меняет цвет в конце титрования, когда происходит нейтрализация всех кислых валентностей желудочного сока, это IV уровень титрования.

Для определения свободной кислотности используется индикатор диметиламидоазобензол. В присутствии свободной НС1 индикатор приобретает красный цвет, при ее нейтрализации - цвет «семги», это II уровень титрования.

  1. Базальная секреция - это секреция желудка натощак. Для этого вводится зонд, извлекают все содержимое желудка, затем в течение часа каждые 15 минут извлекают все содержимое желудка в отдельные банки (всего 4 порции).

Существуют энтеральные и парентеральные раздражители желудочной секреции.

Энтеральные - капустный отвар, мясной бульон, кофеиновый и алкогольный завтраки. Эти раздражители вводятся через зонд. Парентеральные - гистамин, пентагастрин. Эти в-ва вводятся подкожно и являются более сильными раздражителями желудочной секреции.

  1. Работать необходимо в средствах индивидуальной защиты, на специальных подносах. Весь использованный инструментарий, отработанный материал подлежат дезинфекции, стерилизации и дальнейшей утилизации.

    Билет № 19.

  1. Цвет кофейной гущи желудочного содержимого обусловлен примесью крови из желудка. Под воздействием соляной кислоты гемоглобин превращается в соляно кислый гематин, который имеет коричневый цвет. Желудочное содержимое имеет цвет кофейной гущи при раке желудка, язвенной болезни желудка.

  2. Противопоказания к зондированию: больные с артериальной гипертензией, пороками сердца, аневризмой аорты, варикозное расширение вен пищевода, а также при желудочных кровотечениях, во второй половине беременности, у престарелых и маленьких детей, при острых отравлениях и ожогах слизистой оболочки пищевода и желудка.

  3. Кислотность желудочного сока можно определить зондовым и беззондовым методами исследования.

Зондовые методы: зондирование тонким зондом Полученный при зондировании желудочный сок титруют 0,1 р-ром NaOH двумя методами: по Михаэлису и по Тепферу с применением индикаторов. Беззондовые методы:

1 )десмоидная проба по Сали - это оценка кислотности желудочного сока по окраске мочи метиленовым синим после введения его в желудок.

метод ионообменных смол - основан на приеме во внутрь ионообменных смол, связанных с каким либо легко поддающимся исследованию низкомолекулярным соединением. В желудке Н-ионы вступают в реакцию с ионообменной смолой, освобождая эквивалентное кол-во низкомолекулярного соединения. Которое может быть количественно определено в моче.

ацидотест - на основе метода ионообменных смол.

рН- метрия - измерением рН желудочного содержимого при помощи радиопередатчика, проглатываемого больным.

Общая кислотность складывается из суммы всех кислотореагурующих веществ (сводной РС1, кислотного остатка, в патологии молочной, масляной и уксусной кислоты).

  1. Работать необходимо в средствах индивидуальной защиты, на специальных подносах. Весь использованный инструментарий, отработанный материал подлежат дезинфекции, стерилизации и дальнейшей утилизации.

    Билет № 20.

  1. Необходимо провести реакцию на наличие в кале стеркобилина, который придает калу коричневый цвет.

  2. Исследование имеет цель установить в кале наличие или отсутствие стеркобилина или неименного билирубина. Для количественного определения стеркобилина в кале пользуются пробой с сулемой.

Кусочек кала величиной с лесной орех растирают в фарфоровой ступке с 3-4 мл 7,5% р-ра сулемы. Оставляют на сутки при комнатной температуре. При наличии стеркобилина эмульсия приобретает розовое или красное окрашивание; при его отсутствии цвет не изменяется. Если в кале присутствует неизмененный билирубин, то он под влиянием сулемы превращается в биливердин и придает эмульсии зеленую окраску.

  1. Моча приобретает зеленовато-желтый цвет («пива»), реакция на билирубин будет резко положительной, уробилиновые тела будут отсутствовать. Увеличение прямого билирубина в крови, он выводится с мочой, придавая ей специфическую окраску цвет «пива» (паренхиматозные гепатиты, механические желтухи).

  2. Обеззараживанию подвергаются кал от больных и бактерионосителей, а также кал, содержащий яйца гельминтов. Кал собирают в закрытую маркированную емкость с делениями, до отметки - 1 литр, доливают воду и засыпают сухой хлорной известью, известью белильной термостойкой, нейтральным гипохлоритом Са из расчета 1:5 на 1 час.

Кал, в котором обнаружены яйца гельминтов, обеззараживают 20% хлорной известью в течение 2-х часов. Лабораторную посуду (склянки, колбы, предметные стекла, стеклянные палочки, т.д.) обеззараживают 10% р-ром хлорно- известкового молока в течение 2-х часов, 20% р-ром хлоро- известкового молока на бОмин. Или кипяток в 2% р-ре моющих средств в течение 15 минут с момента закипания.