902

УДК 575.224.22:636.2

Ж.Ж. Конырбай – магистрант 1 курса, Т.Е. Тлеуалиева – ассистент, С. Хизат – ассистент;

Е.С. Усенбеков – научный руководитель, доцент, Казахский национальный аграрный университет, г. Алматы, Казахстан

ПЦР ДИАГНОСТИКА ДЕФИЦИТА XI ФАКТОРА СВЕРТЫВАНИЯ КРОВИ У КОРОВ ГОЛШТИНСКОЙ ПОРОДЫ

Аннотация. Проведен мониторинг коров голштинской породы ТОО «Амиран» на носительство генетического заболевания – дефицита XI фактора свертывания крови. Авторы рекомендуют для детекции инсерции нуклеотидных последовательностей, размером 76 п.н. использовать метод полимеразной цепной реакции. По результатам исследования (N= 54) носителей генетического дефекта – дефицита XI фактора свертывания крови не выявлены.

Ключевые слова: дефицит XI фактора свертывания крови, аутосомальная рецессивная мутация, инсерция, репродуктивная функция коров.

Согласно информации Online Mendelian Inheritance in animals в настоящее время у крупного рогатого скота выявлено 505 генетически обусловленных аномалий, из них 133 наследственных заболеваний идентифицируются такими молекулярно-генетическими методами исследования, как полимеразная цепная реакция, полиморфизм длин рестрикционных фрагментов [1].

Дефицит XI фактора свертывания крови крупного рогатого скота является аутосомальным рецессивным наследственным генетическим дефектом. Часто, этиологическим фактором большинства скрытых генетических дефектов у животных являются точечные мутации в кодирующей части соответствующих генов. Известно, что генетический дефект, дефицит XI фактора свертывания крови крупного рогатого скота (FXID) наоборот является последствием вставки нуклеотидной последовательности в составе экзона 12 гена FXI длиной 76 пар оснований. В результате инсерции появился STOP codon (TAA) [2].

Высокая скорость распространения вредных мутаций определяется рецессивным характером их наследования. Продукты таких генов, как правило, участвуют в регуляции тканеспецифичных функций и неблагоприятные эффекты мутантного аллельного варианта компенсируются в гетерозиготе нормальной функцией аллеля дикого типа. Селекция на уровне фенотипа является неэффективной в связи с низкой частотой гетерозигот по отношению к гомозиготам. Фенотипически, дефицит XI фактора (FXID) свертывания крови у телят характеризуется длительным кровотечением из пупочного канатика, анемией. У коров, гетерозиготных носителей дефицита XI фактора свертывания крови молозиво розового цвета, обычно, такие животные воспримчивы пневмонии, маститам и эндометритам [3].

В настоящее время молекулярно-генетические основы генетических дефектов крупного рогатого скота достаточно хорошо изучены, на основании этих исследований разработаны методы диагностики наследственных заболеваний. Все наследственные заболевания животных в той или иной степени связаны с нарушением репродуктивной функции у коров, снижением резистентности организма телят, у носителей мутации генетического дефекта часто регистрируются эмбриональная смертность, повышение индекса осеменения в результате ранней смертности предимплантационных эмбрионов в период стельности.

Целью работы была разработка метода идентификации дефицита XI фактора свертывания крови методом полимеразной цепной реакции и изучение распространенности данной патологии у коров голштинской породы ТОО «Амиран» Алматинской области.

Материалы и методы исследования. Эксперименты проводились на 54 коровах голштинской породы ТОО «Амиран» в учебно-научно-диагностической лаборатории Казах- станско-Японского инновационного центра Казахского национального аграрного университета.

251

В качестве материала для исследования была использована периферическая кровь коров. ДНК из крови коров выделяли с помощью набора «ДНК сорб В». Полимеразную цепную реакцию проводили на термоциклере «Терцик» производства России. Для детекции носителей дефицита XI фактора свертывания крови использовали праймеры: F- 5′- CCCACTGGCTAGGAATCATT - 3′ и R- 5′- CAAGGCAATGTCATATCCAC - 3′. Использование данной пары праймеров позволяет амплифицировать фрагмент гена FXID размером 244 п.н. у здоровых гомозиготных животных, 244 п.н. и 320 п.н. у гетерозиготных носителей и 320 п.н. у гомозиготных носителей генетического дефекта (рис 1).

Рисунок 1. Электрофореграмма продукта амплификации участка гена FXI

Условия проведения ПЦР: первый шаг - денатурация ДНК при температуре 95 °С – 10 минут, второй шаг 35 циклов, денатурация при 95 °С – 30 сек, отжиг праймеров – 55 °С 60 сек и элонгация при температуре 72 °С 30 сек. Завершающий синтез при 72 °С продолжительностью 10 мин. Хранение при +4 °С. Объем реакционной смеси был 50 мкл, имеющий следующий состав: 5 мкл 10 Х буфера для ПЦР, 1,5 мМ MgCl2, 2,5 мкл 25 мкМ прямого и обратного праймеров, 5 мкл 0,2 мМ концентрации каждого dNTP, 0,5 мкл фермента Taq Polymerase с активностью 5u/μl, 5 мкл ДНК и 26,5 мкл дистиллированной воды.

Результаты исследования. Амплификация нужного фрагмента гена FXID проводилась с использованием прямого и обратного праймеров в течение 35 циклов. ПЦР диагностика данного генетического дефекта основана так, что у здоровых гомозиготных животных при амплификации образуется один бэнд размером 244 п.н., в случае гетерозиготного носительства появляется, в результате инсерции (вставки нуклеотидных последовательностей 76 п.н.) образуется второй бэнд размером 320 п.н.

Нами были тестированы методом полимеразной цепной реакции 54 голов коров голштинской породы ТОО «Амиран. На электрофореграмме хорошо видны полоски ДНК размером 244 п.н, лунки (1-13) и лунка М - ДНК маркер плазмида pUC19DNA (рис.1), рестрицированная эндонуклеазой MspI. Данный ДНК маркер имеет, фрагменты длиной 501,489, 404, 331, 242, 190, 147, 111, 110, 67, 34, 34 и на электрофореграмме хорошо видно, что амплификат размером 244 п.н. идет на уровне 242 п.н. ДНК маркера. Результаты исследований свидетельствуют, что среди исследуемых животных отсутствуют носители генетического дефекта – дефицита XI фактора свертывания крови крупного рогатого скота (FXID).

В последнее время Республика Казахстан ежегодно в большом объеме закупает живой племенной скот зарубежной селекции. В связи с вышеизложенным, считаем необходимым проведение мониторинга всего племенного поголовья на носительство данного наследственного заболевания, так как у гетерозиготных носителей дефицита XI фактора свертывания не проявляются клинические признаки этого генетического дефекта.

Литература

1.Жигачев А.И., Эрнст Л.К., Богачев А.С. О накоплении груза мутаций в породах крупного рогатого скота при интенсивных технологиях воспроизводства и улучшения по целевым признакам // Сельскохозяйственная биология, 2008, № 6, C. 25-32.

2.Marron B.M., Robinson J.L., Gentry P.A., Beever J.E.Identification of a mutation associated with factor XI deficiency inHolsteincattle.Anim Genet. 2004 Dec;35(6):454-6.

3.Kunieda M., Tsuji T., Abbasi A.R., Khalaj M., Ikeda M., Miyadera K., Ogawa H.,Kunieda T. (2005) An insertion mutation of the bovine F11 gene is responsible for factor XI deficiency in Japanese black cattle. MammGenom 16:383-389.

252

УДК 636.32/38.084 (470.53)

А.В. Кравченко, М.А. Ахметшин – студенты 1 курса; В.А. Ситников – научный руководитель, профессор, ФГБОУ ВО Пермская ГСХА, г. Пермь, Россия

РОМАНОВСКАЯ ПОРОДА ОВЕЦ, ПРОБЛЕМЫ И ПЕРСПЕКТИВЫ РАЗВИТИЯ

Аннотация. Рассмотрены проблемы и перспективы развития романовской породы овец. Изучены: продуктивные качества овец романовской породы; сложившиеся цены на продукцию романовского овцеводства. Выявлены проблемы с реализацией продукции и намечены перспективы развития этой породы в Пермском крае.

Ключевые слова: овцы, порода, мясо, шерсть, цены.

Введение. В настоящее время в Пермском крае общее поголовье всех овец составляет 61 тыс. голов, из них маточное поголовье овец романовской породы – 5 тыс. голов. Государственной программой «Развитие сельского хозяйства и устойчивое развитие сельских территорий в Пермском крае» намечено увеличение маточного поголовья овец романовской породы до 7 тыс. голов и дальнейшее повышение рентабельности овцеводства [1].

Романовская порода по своим хозяйственно полезным признакам превосходит другие породы: выход ягнят, качество овчины. Мясо овец романовской породы отличается мраморностью, нежностью [2].

В тоже время в связи с низкой рентабельностью отрасли овцеводства в Пермском крае не наблюдается увеличение поголовья, увеличения выхода продукции овцеводства. Поэтому выявление причин, препятствующих увеличению выхода продукции романовского овцеводства,решение проблем является актуальным.

Цель исследования – изучить современное состояние романовского овцеводства в Пермском крае для определения перспектив его развития.

Задачи исследования: определить поголовье на современном этапе на основании статистических данных; изучить сложившиеся цены на продукцию романовского овцеводства; выявить проблемы и наметить перспективы развития отрасли.

Методы исследования. Анализ статистических данных на основании литературных источников.

Результаты исследования. В Пермском крае на данный момент насчитывается порядка 5 тысяч племенных овцематок романовской породы, в том числе, в ООО «Ноев Ковчег» Пермского районапорядка 1700 голов, в ООО «Агрофирма Юговское» Пермского района 600 голов, в ООО «Партнёр» Лысьвенского района 220 голов и в других[1; 8].

Анализ сложившихся цен рынка на продукцию романовского овцеводства представлен в таблице 1.

Таблица 1

Реализационная цена единицы продукции

Согласно таблице 1, наибольшую выгоду получают овцеводы при реализации мяса в виде полуфабрикатов, а также овчин. Низкая рентабельность – от реализации шерсти, что создаёт проблему получения прибыли.

Овцеводческие хозяйства могут также извлекать выгоду от продажи овец. Анализ стоимости овец романовской породы представлен в таблице 2.

253

Цены на овец романовской породы зависят от возраста и живой массы, с увеличением живой массы возрастает цена [8].

Проблемы. Одной из проблем на данном этапе является низкая рентабельность шерсти овец романовской породы, вызванная отсутствием переработки этого вида продукции. Единственным предприятием по переработке шерсти в Пермском крае является пимокатный цех по производству валяной обуви в городе Кудымкар, куда необходимо шерсть доставить для переработки, а потом за ней дополнительно приехать.

Следующая проблема, неполноценное кормление суягных и лактирующих овцематок в зимний период, когда основным кормом в рационах овец служит сено преимущественно из злаковых культур. При плановых среднесуточных приростах в 200 г и более, фермеры получают менее 100 г. Это ведет к тому, что увеличивается время откорма, повышается себестоимость прироста, снижается рентабельность продукции овцеводства [5; 6].

Овцы романовской породы являются многоплодными. За один окот овцематка может принести от двух до семи ягнят. Живая масса при рождении связанна с типом рождения ягнят. Ягнята, родившиеся в многоплодных помётах, имеют меньшую живую массу при рождении, создают проблему в их сохранности. При получении в окоте четырех и более ягнят овцематка не в состоянии прокормить потомство. Очевидно,нужно проводить селекцию на получениеменьшего количество приплода в зависимости от планируемых окотов на овцематку в течение года [2].

Необходимо проводить дальнейшую селекционную работу по созданию новых линий, так как влияние родоначальника на продуктивные качества потомства через 6 поколений не распространяется [4].

Перспективным направлением в развитии романовского овцеводства, на данном этапе, является использование данной породы для выведения новых породных групп с высокими мясными характеристиками при сохранении многоплодия [3; 7].

По сообщению О.С. Лебедь (2017) из Ленинградской области, вего хозяйстве, в результате скрещивания овец романовской породы и баранов породы катадин была получена породная группа – катумская. Животные этой породной группы имеют чисто мясное направление, при живой массе 80-100 кг в зависимости от пола. У овец формируется не шерстяной, а волосяной покров. Нанаращивание шерстиорганизм животного не тратит питательные вещества, а они идут на наращивание мышечной массы [7].

Выводы. На данном этапе, в Пермском крае, имеется база для развития овец романовской породы, необходимо только создать оптимальные условия для содержания овец,совершенствовать кормовую базу и кормление, проводить племенную работу с линиями во избежание родственного разведения.

Предложение. Романовская порода обладает высокими продуктивными качествами, из которых мясная продукция наиболее востребована и рентабельна, поэтомуесть смысл рекомендовать отдельным не племенным фермерским хозяйствам развивать мясное направлениечерез романовскую породу с использование катумской породной группы.

Литература

1.Государственная программа «Развитие сельского хозяйства и устойчивое развитие сельских территорий в Пермском крае на 2014-2020 годы» / Под ред. Огородова И.П. Пермь: Издательство ООО РК «ЗёБРА», 2013. 163 с.

2.Ерохин, А.И., Катаев В.И., Ерохин Е.С. Овцеводство. Воронеж: ФГБОУ ВПО Воронежский ГАУ, 2014. 450 с.

3.Жиряков, А.М. Методика создания и разведения мясо-шубных овец в типе романовской породы с повышенной жизнеспособностью / А.М. Жиряков, В.Г. Двалишвили, В.Д. Мильчевский и др. Дубровицы: Изд-во ГНУ «ВНИИЖ Россельхозакадемии», 2009. 51с.

254

4.Костылев, М.Н., Барышева М.С. Актуальные вопросы сохранения генофонда овец романовской породы // Овцы, козы, шерстяное дело. №4. 2014. С.10-12.

5.Хохлов, В.В. Эффективность использования глицерина в кормлении суягных и лактирующих овцематок романовской породы: автореф.дис. канд.с.-х.наук. Оренбург, 2016. 18 с.

6.Хохлов В.В., Ситников В.А. Применение глицерина в качестве энергетической добавки к рационам суягных овцематок / Сб. материалов Всероссийской научно-практической конференции посвященной 85-ю основания Пермской ГСХА и 150-ю со дня рождения Д.Н. Прянишникова «Агротехнологии XXI века». Пермь: Изд-во «Прокростъ», 2015. Ч.3. С.72-75.

7.Лебедь, О.С. История создания Катумских гладкошерстных овец (Электронный ресурс:URL: http://katuma.ru /дата обращения: 22.03.17).

8.ООО «Ноев Ковчег» (Сайт: noev-k.com /датаобращения 24.03.2017).

УДК 619:[616-093/-098](57.085.23)

О.И. Лазарева – аспирантка 3 курса; Т.Н. Сивкова – научный руководитель, профессор,

ФГБОУ ВО Пермская ГСХА, г. Пермь, Россия

УЛЬТРАСТРУКТУРНЫЕ ИЗМЕНЕНИЯ КЛЕТОЧНОЙ СТЕНКИ ДРОЖЖЕЙ SACCHAROMYCES CEREVISIAE ПОД ДЕЙСТВИЕМ СОМАТИЧЕСКОГО ЭКСТРАКТА

ANISAKIS SIMPLEX

Аннотация. В статье приведены результаты исследования по использованию дрожжей Saccharomyces cerevisiae в качестве модели эукариотической клетки для изучения влияния соматического экстракта личинок анизакид. При сканирующей электронной микроскопии обнаружено повреждение клеточной стенки дрожжей под действием экстракта.

Ключевые слова: Saccharomyces cerevisiae, эукариотическая клетка, соматический экстракт, личинки Anisakis simplex.

Цитологическими и гистологическими методами доказано, что соматические экстракты и метаболиты гельминтов оказывают негативное влияние на клетки хозяина. В качестве модели для изучения данного воздействия в основном применяют соматические и половые клетки лабораторных животных или культуры клеток [3]. Однако в качестве модели могут быть исполь-

зованы дрожжи Saccharomyces cerevisiae [4,6; 7;8].

Клетки дрожжей по строению и составу схожи с эукариотическими клетками и являются высокочувствительными к внешним воздействиям [2]. К достоинствам данных объектов исследования относятся: доступность, экономичность, информативность, нетребовательность к условиям культивирования [5], а также возможность изучения ультраструктуры объекта в целом.

Целью данного исследования было изучение влияния соматического экстракта личинок Anisakis simplex на Saccharomyces cerevisiae с помощью сканирующей электронной микроскопии.

Материалы и методики исследования. Для опыта использовали стерильный соматический экстракт из личинок A. simplex с содержанием белка 3,6 г/л. Среду Лозина–Лозинского, содержащую взвесь дрожжей Saccharomyces cerevisiae в качестве источника питания для культуры инфузорий Paramecium caudatum. Так как, было установлено, что разведенный 1:2 экстракт оказался более токсичным для парамеций [9], применяли данное разведение. Контрольные клетки дрожжей оставались интактными.

К питательной среде добавляли равнозначное количество разведенного экстракта личинок A. simplex на 15 минут. Полученную смесь центрифугировали 3 минуты при 1000 об/минуту и фиксировали 2,5%-ным раствором глютарового альдегида в фосфатном буфере.

Препарирование для сканирующей микроскопии проводили следующим образом: образцы фиксировали в 1,5%-ом растворе глютарового альдегида в 0,05М какодилатном буфере (рН 7,2) при 4°С в течение 1 часа, затем трижды отмывали в том же буфере. Далее образцы дополнительно фиксировали в 1%-ом растворе OsO4 в 0,05М какодилатном буфере (рН 7,2) в течение

255

3 часов при 20°С. После обезвоживания в серии спиртов возрастающей концентрации (начиная с 30% до 100% в течение 20 минут на каждом этапе) клетки дополнительно пропитывали в терт-бутиловом спирте (tert-Butanol, SIGMA-ALDRICH) в двух сменах по 20 минут при 26°С. Далее образцы замораживали в терт-бутиловом спирте и проводили процедуру замораживаниявысушивания в установке JFD-320 (JEOL, Япония) в соответствии с рекомендациями фирмыпроизводителя. На поверхность высушенных образцов наносили золото в напылительной установке JFC 1100 (JEOL, Япония). Электронно-микроскопический анализ проводили на сканирующем электронном микроскопе JSM-6510LV (JEOL, Япония).

Результаты исследования. Микроскопические исследования показали морфологические изменения клеток дрожжей в виде образования пор разного размера. На рисунке видны остатки капсулы в виде полупрозрачного светлого тяжа, поры и разрыв клеточной стенки.

Рис. Разрыв клетки Saccharomyces cerevisiae под воздействием соматического экстракта

A. simplex. Увел.х 10000

Известно, что клеточная стенка защищает протопласт дрожжей от осмотического разрыва и придает клетке определенную форму. Значительные преобразования в структуре дрожжевой клетки зависят от многих причин: изменения состава среды, повышения концентрации лимитирующих факторов, при стрессовых физиологических воздействиях, особенно при аэробноанаэробных сдвигах. При этом могут происходить ультраструктурные перестройки мембранного аппарата не только клетки, но и самих органелл, в том числе и митохондрий [2].

Имеются сведения, подтверждающие, что клеточные стенки дрожжей обладают выраженной адсорбирующей способностью к токсинам, в том числе к микротоксинам [1].

Выводы и предложения. Установлено, что соматический экстракт личинок A.simplex вызывает ультраструктурные морфологические изменения клеточной стенки дрожжей S.cerevisiae, что способствует ее гибели. Дрожжи S.cerevisiae возможно использовать для изучения влияния экстрактов и метаболитов гельминтов на эукариотическую клетку in vitro.

Литература

1.Ахмадышин Р. А., Канарский А. В., Канарская З. А. Клеточная стенка дрожжей Saccharomyces cerevisiae - эффективный адсорбент микотоксинов // Вестник Казанского технологического университета. 2007. №3-4. С.127-129.

2.Бабьева И.П., Чернов И.Ю. Биология дрожжей. М.: Товарищество научных изданий КМК. 2004. 239 с.

3.Бекиш В. Я., Бекиш О.-Я.Л. Механизмы генотоксических эффектов в соматических и генеративных клетках хозяина при гельминтозах // Вестник ВГМУ. 2005. №4. С.73-79.

4.Вятчина О.Ф., Жданова Г.О., Стом Д.И. Экспрессный приём биологического анализа качества вод с помощью сахаромицетов // Естественные науки. Журнал фундаментальных и прикладных исследований.2009.№ 3 (28). С. 86-88.

5.Вятчина О. Ф. Жданова Г.О. Новая тест-реакция для определения некоторых классов загрязнителей в окружающей среде//Baikal research journal. 2011.№ 1. С. 52.

6.Вятчина О.Ф., Жданова Г.О., Стом Д.И., Хамаганова Е. Р. Оценка токсичности пестицидов с использованием Saccharomyces cerevisiae// В мире научных открытий. Изд-во: Общество с ограниченной ответственностью "Научно-инновационный центр" (Красноярск). 2015. №12.2. С.397-409.

256

7.Жданова Г.О., Вятчина О.Ф., Быбин В. А., Стом Д. И., Федосеева Г. М.Использование Saccharomyces cerevisiae для оценки биологической активности лекарственных препаратов//Сибирский медицинский журнал (Иркутск).2013. Т.119.№4.С104-106.

8.Казимагомедов М.К., Исмаилов Э.Ш. Использование дрожжей как тест-объекта для оценки качества воды

ижидких сред // Юг России: экология, развитие. 2010. №3. С.103-106.

9.Лазарева О.И., Сивкова Т.Н., Чугунова Е.О. Токсическое действие соматического экстракта личинок Anisakis simplex (Nematoda) на одноклеточные микроорганизмы Paramecium caudatum // Современные проблемы теоретической сборник научных статей / ред.: К. В. Галактионов, А. В. Гаевская. Севастополь: Изд-ль Бондаренко Н. Ю. 2016. С.94-96.

УДК 636.2.084.52:636.033

В.В. Мальцев – студент 4 курса; В.И. Полковникова – научный руководитель,

ФГБОУ ВО Пермская ГСХА, г. Пермь, Россия

СРАВНИТЕЛЬНАЯ ОЦЕНКА РОСТА И РАЗВИТИЯ МОЛОДНЯКА АБЕРДИН-АНГУССКОЙ ПОРОДЫ В ЗАВИСИМОСТИ ОТ ПРОИСХОЖДЕНИЯ

Аннотация. Проведены исследования по изучению роста и развития молодняка крупного рогатого скота абердин-ангусской породы разной селекции.Рассчитаны абсолютный и среднесуточный приросты за период от рождения до 9-и месяцев. Установлено, что молодняк канадской селекции отличался интенсивностью роста в период выращивания, имел более высокие приросты, в результате его разведение является экономически выгоднее.

Ключевые слова: абердин-ангусская порода, молодняк, среднесуточный прирост, абсолютный прирост, коэффициент корреляции.

Важным резервом увеличения производства говядины является повышение живой массы молодняка, реализуемого на мясо.

Рост молодняка зависит от условий кормления, содержания и от климата. При заметной недостаточности этих условий наступает задержка роста частей тела животного. При этом задерживается рост в основном тех тканей и органов, которые в данный период обладали наивысшей интенсивностью ростПравильно определенная интенсивность роста молодняка в разные периоды роста имеет важное значение для выращивания высокопродуктивных животных.

При организации выращивания и откорма молодняка учитывают особенности роста и развития животного, которые кроме всего определяются наследственностью и условиями окружающей среды.

Основная задача мясного скотоводства – производство высококачественной говядины и тяжелого кожевенного сырья за счет разведения крупного рогатого скота специализированных мясных пород и их помесей [1].

Внастоящее время основными мясными породами крупного рогатого скота, разводимыми в России, являются абердин-ангусская порода (34,6%), калмыцкая (30,6%), герефордская 17,6% и казахская белоголовая (11,5%) [2].

Таким образом, абердин-ангусская порода, является самой распространенной и наиболее перспективной для разведения на территории Российской Федерации.

Цель исследований–сравнить рост и развитие молодняка абердин-ангусской породы в зависимости от происхождения.

Взадачи входило:

Проанализировать рост и развитие молодняка от рождения до 9 месяцев;

Рассчитать коэффициенты корреляции роста и развития молодняка разного происхож-

дения;

Провести экономическую оценку эффективности выращивания молодняка ; Исследования проводились в ООО «Красотинское» Березовского района Пермского края

впериод 2016-2017 года,согласно схеме опыта, представленной в таблице 1. Для проведения исследований было отобрано по 20 голов бычков и телочек абердин-ангусской породы, принадлежащих к канадской и американской селекции.

257

Таблица 1

Схема опыта

Абердин-ангусская порода

Животные находились в одинаковых условиях кормления и содержания.Данные о показателях динамики живой массы молодняка от рождения до 9 месяцев брали из племенной документации, находящейся в хозяйстве.

На основании данных живой массы определялась интенсивность роста, были рассчитаны абсолютный и среднесуточный приросты, также коэффициент корреляции, показывающий зависимость массы при отъеме от массы при рождении.

Для анализа роста и развития молодняка, составлена динамика массы от рождения до 9 месяцев, так же рассчитаны абсолютный и среднесуточный прирост живой массы за исследуемый период.

Данные таблицы 2 показывают, что существенной разницы в живой массе при рождении между бычками и телочками американской и канадской селекции не наблюдалось. В период выращивания от рождения до 9-и месячного возраста более высокими среднесуточными приростами отличались бычки и телочки канадской селекции, 1024г. и 928г., соответственно. Превосходство по абсолютному приросту бычков и телочек канадской селекции над бычками и телочками американской селекции составило 6,0кг.и 7,6кг, соответственно.

Следовательно, бычки и телочки канадской селекции отличались лучшим ростом и развитием в период выращивания от рождения до 9-и месяцев, по сравнению с молодняком американской селекции.

Для установления связи между массой при рождении и массой при отъеме рассчитывались коэффициенты корреляции (табл.3).

258

Полученный коэффициент корреляции свидетельствует о том, что связь между признаками положительная и тесная.

Расчет стоимости прироста проводился с учетом стоимости 1кг 95 рублей (табл.4). Экономическая эффективность выращивания молодняка разной селекции показывает, что за счет более высокой интенсивности роста можно получить больше продукции, в связи с чем увеличивается прибыль.уменьшаются затраты на содержание и кормление. Из данных таблицы 4 видно, что в расчете на 40 голов получено прироста больше на 272 кг от молодняка канадской селекции. Разница в денежном эквиваленте составила 25840 рублей.

Таким образом, экономически выгодно разведение на предприятии крупного рогатого скота абердин-ангусской породы канадской селекции

Литература

1.Багрий Б.А. Разведение и селекция мясного скота. М.: ВО «Агропромиздат», 1991. 256 с.

2.Современное состояние отрасли мясного скотоводства в России / под общей редакцией И.М. Дунина, В.И. Шаркаева, Г.А. Шаркаевой. ФГБНУ ВНИИплем, 2014. 1-10 с.

УДК 611.01 – 675.031.8

Д.А. Моисеева, Э.Р. Абузов – студенты 1 курса; Н.Б. Никулина – научный руководитель, профессор, ФГБОУ ВО Пермская ГСХА, г. Пермь, Россия

СРАВНИТЕЛЬНАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА ДИКИХ И ДОМАШНИХ ЗАЙЦЕОБРАЗНЫХ

Аннотация. Изучены анатомические особенности двух видов животных. Установлено, что домашний кролик имеет относительно крупные размеры. Выявлены различия в строении скелета у зайца-русака и домашнего кролика. Морфометрия некоторых внутренних органов показала существенные отличия.

Ключевые слова: заяц-русак, домашний кролик, скелет, внутренние органы.

Введение. Отряд Зайцеобразных включает в себя достаточное число родов, наиболее распространенными из них являются зайцы и кролики. Несмотря на широкое распространение рода зайцев на территории России, анатомические и физиологические особенности диких зайцеобразных остаются малоизученнами в отличие от кролика домашнего, строению которого посвящено большое количество научных работ и книг [2].

Ареал обитания зайца-русака охватывает европейские лесостепи, Турцию, Иран, север африканского континента и Казахстан [4, 5]. Кролик содержится в качестве домашних любимцев на всех континентах нашей планеты.

Целью настоящей работы явилось изучение анатомического строения зайца-русака и домашнего кролика в сравнительном аспекте.

Методика. Изучение анатомических особенностей двух видов животных проводилось методом препарирования трупов кролика домашнего и зайца-русака, предоставленных частными лицами, занимающимися охотой. После препаровки внутренние органы линейно измерялись (длина, ширина), а скелеты вываривались и их элементы сравнивались.

259

Результаты исследований. Внешний вид данных представителей семейства Зайцевых сильно отличался. Так, длина тела зайца-русака составила 55 см, кролика - 67 см, а вес соответственно 4,8 и 5,5 кг. Причем тело зайца стройное, сжато с боков, а у кроликов тело овальной формы, коренастое. Мех у русака был блестящим, шелковистым, с характерной волнистостью, серо-белого цвета. Шерсть у домашнего вида была черной, мягкой, длина ее превосходила таковую у зайца.

Характерной чертой зайца являются уши клиновидной формы до 15 см длиной, благодаря чему слух у него развит лучше, чем обоняние и зрение. У кролика уши были более массивными, но короткими (10 см) и не достигали кончика морды.

Задние конечности у этих млекопитающих имели длинные ступни, развитые сильнее передних. У зайца-русака длина ступни длиннее головы (более 11 см), у кролика - равна ей. В связи с этим площадь ступни у дикого представителя в 2 раза больше, чем у домашнего вида, благодаря чему он не проваливается при беге по снегу.

При изучении строения костной системы установлено, что скелет всех представителей семейства Зайцевых имеет сходные черты и своеобразную форму: сильно сгорбленное (особенно в покое) туловище, вытянутая поясница, удлиненный таз, короткий хвост. Шея короткая и почти прямая, несет голову со слабо развитой мозговой частью и увеличенной лицевой. Грудные конечности укороченные, тазовые - очень длинные и мощные. Своеобразие формы скелета кролика и зайца связано с образом их жизни.

Нами были выявлены и некоторые отличия в строении скелета. Так, межтеменная кость у зайца сливалась с затылочной, а у кролика существовала самостоятельно. Носовая полость у русака была более короткая и обширная, ее выходные отверстия (хоаны) тоже широкие. У кролика носовая полость была вытянута, а хоаны резко сужены. Большое затылочное отверстие у зайца более вытянуто в вертикальном направлении, а у кролика — в поперечном. Задний отросток скуловой кости у диких зайцеобразных вдвое короче, чем у домашних. Атлант русака был

в2 раза короче, чем у кролика. Гребень эпистрофея у домашнего представителя семейства раздваивался в каудальной части, а у зайца нет. Причем краниальный край гребня второго шейного позвонка сильно нависал над атлантом, а у русака нет.

Ребра у зайца имели округлую форму (у кролика – они прямые) и превышали длину таковых у кролика в среднем в 2 раза. Ость лопатки у русака относительно кролика невысокая, акромион небольшого размера. В то время как у кролика он достигал бугра лопатки и на нем располагался перпендикулярно поставленный заднеакромиальный отросток.

Вморфологическом отношении заяц отличался от кролика преимущественно пропорциями конечностей, особенно задних лап. У дикого представителя семейства заметно иную форму имели кости предплечья: нижняя половина локтевой кости гораздо тоньше лучевой (примерно

в2 раза) и, кроме того, средняя часть локтевой кости располагалась преимущественно сзади лучевой. У кролика локтевая и лучевая кости были равны по толщине, локтевая лежала преимущественно сбоку, что является приспособлением к вращению конечности, связанному с рытьем. У зайца имела место также и некоторая укороченность 1-го, небольшого пальца. Длина его без когтя составляет меньше половины длины смежной 2-й пястной кости, а у домашнего кролика — больше ее половины. Головка малоберцовой кости у кролика крепилась к мыщелкам большеберцовой, а у русака находилась на расстоянии 6-7 мм от нее.

У зайца была недоразвита ключица, что привело к сильному развитию подключичной мышцы. Это позволяет ему развивать скорость около 70 километров в час и совершать резкие развороты. У кролика эта мышца не развита, т.к. кролик прячется от врагов в норах и ему не требуется настолько большая скорость.

Еще одно различие состояло в механизме, укрывающем семенники в паховые ходы: выжимание семенников из мошоночных мешков у русака происходит под действием мощного наружного поднимателя. У кролика мышцы семенного канатика развиты слабо.

Дикие и домашние зайцеобразные также отличаются рядом особенностей в строении и развитии внутренних органов. Из них особо следует отметить чрезвычайно сильное развитие дыхательного аппарата у русака, представленного очень широкой и податливой трахеей и ши-

260