- •Методы экологических исследований
- •Биоиндикация уровня загрязненности атмосферного воздуха
- •Влияние загрязнения воздуха на состояние лишайников
- •Методика определения степени загрязнения воздуха по лишайникам
- •Метод пересадки лишайников
- •Определение уровня загрязнения атмосферного воздуха окисью углерода па конкретном участке автотранспортной магистрали
- •Расчет показателей загрязнения атмосферного воздуха и анализ результатов
- •Изучение лесного фитоценоза.Экологическая группа растений
- •Методы мониторинга водных объектов
- •Определение степени загрязненности по индексу Уотлея и Гуднайта
- •3. Дополнительные методы
- •Методика работы
- •Определение уровня сапробности воды по комплексу индикаторных видов
- •Формуляр для регистрации моллюсков
- •Изучение лугового фитоценоза.Экологическая группа растений. Индивидуальное задание
- •Специальные приспособления для сбора наземных беспозвоночных
- •Экскурсия на луг. Сбор насекомых методом кошения
- •Методики учета животных в экологических
- •Влияние дождевых червей на почвообразование
- •Изучение скорости переработки листового опада с участием кивсяков
- •Опад и лесная подстилка
- •Двупарноногие многоножки (кивсяки) – Diplopoda Белгородской области.
Определение степени загрязненности по индексу Уотлея и Гуднайта
Показателем качества воды в озерах и прудах является ее трофность, т.е. количество органических веществ, накопленных в процессе фотосинтеза в условиях наличия биогенных элементов (азот, фосфор, калий). После смерти животных возникают проблемы с разложением их трупов и изменением газового состава воды. Процесс повышения трофности водоема называется эвтрофикацией. Роль биоиндикаторов в этом случае могут играть личинки комаров-дергунов или хирономусов и малощетинковые кольчецы. Если в составе донного ила присутствуют названные организмы – это верный признак эвтрофикации. Для выяснения ее степени вылавливают данные организмы с помощью сачка или черпака. Выделяют 3 степени:
1) Слабая
2) Средняя
3) Сильная.
Степень определяют с помощью индекса Уотлея и Гуднайта по формуле, исходя из количества пойманных организмов.
A=M/B × 100, где A – индекс,
М – численность малощетинковых червей,
В – численность всех видов организмов.
После этого используют таблицу.
Состояние водоема |
Индекс Гуднайта и Уотлея | ||||
80 |
60-80 |
60 | |||
Сильное загрязнение |
X |
|
| ||
Сомнительное загрязнение |
|
X |
| ||
Хорошее состояние |
|
|
X |
3. Дополнительные методы
Измерение параметров популяций моллюсков-фильтрантов для оценки способности малых рек к самоочищению. Определение плотности популяции моллюсков производится на площадках 5 кв. м в прибрежной зоне реки. В дно реки недалеко от берега вбивают четыре вешки из любого подручного материала, образуя прямоугольник размером 1 х 5 м. По периметру натягивают бечевку. Длинная сторона прямоугольника располагается вдоль русла реки. Глубина реки на площадке не должна превышать примерно 70 см. Затем производится сбор моллюсков и мертвых раковин в пределах пробного участка. Створки погибших моллюсков могут служить показателем залповых сбросов загрязнителей предприятиями. Выловленных моллюсков сортируют по видам. После этого раковины моллюсков каждого вида измеряют в длину с помощью штангенциркуля или линейки с точностью до 1 мм. Данные фиксируют. Отборка должна повторяться на разных частях реки для повышения точности эксперимента. Строят гистограмму.
Индикация сапробности водоема. Биоиндикаторы – пресноводные моллюски чувствительны к содержанию в воде органических веществ и кислорода. Соответственно выделяют альфа-мезосапробов, бета-мезосапробов и олигосапробов.
Методика работы
С помощью сачка отлавливают моллюсков, обитающих в водоеме. Идентифицируют их по видам. Затем определяют сапробность. Альфа-мезосопробы представлены роговой шаровкой, бета-мезосопробы - обыкновенным прудовиком и ушковатым прудовиком, лужанкой настоящей, лужанкой полосатой, битинией щупальцевой, горошиной, перловицей вздутой; олигосапробы – катушкой обыкновенной, катушкой килевой, перловицей живописцев, утиной беззубкой, катушкой гладкой, катушкой завитой.
Биоиндикация токсичности природных вод с помощью дафний. Дафнии – наиболее часто используемый тест-объект для определения токсичности воды. Критерием острой токсичности является гибель 50% и более дафний в анализируемой воде по сравнению с контролем в течение 24, 48 или 96 ч.
Культура дафний. Исходный материал приобретают в специальных учреждениях или выводят сами. Кормом для дафний служат зеленые водоросли (хлорелла) и хлебопекарные дрожжи. При невозможности культивирования дафний можно допустить использование только что отловленных дафний.
Отбор пробы. Пробу природной (сточной) воды отбирают объемом до 1 л. До биотестирования возможно хранение ее не более 6 часов при температуре 4 °С. Фильтруют через фильтровальную бумагу и заливают в емкости для биотестирования.
Проведение опыта. Берут 3 сосуда для исследуемой воды и 3 сосуда для контрольной пробы, не содержащей токсичных веществ. Наливают в них по 100 мл исследуемой воды и по 100 мл чистой воды для контроля. Исследуемую воду можно разбавить водой, не содержащей токсичных веществ. Контрольную (разбавляющую) воду готовят отстаиванием в течение 7 суток водопроводной воды средней (не более 3,0 мг-экв/л) жесткости, проверяя рН (7,0 — 8,2), температуру (20°С), содержание кислорода (не менее 2 мг/л).
В каждый сосуд помещают по 10 особей дафний. Их переносят стеклянной трубкой диаметром 5 — 7 мм сначала в сачок, а затем в сосуды, погрузив его в воду. Наблюдают за ходом эксперимента через 24, 48 или 96 часов. Дафний не кормят. По окончании эксперимента проводят учет выживших дафний.
Проведение подсчета. На основании полученных результатов в 3-х повторностях рассчитывают среднее арифметическое количество выживших дафний в контроле и опыте по следующей формуле:
100 × (X1 - X2)/X1,
где X1 и X2 – среднее арифметическое количество выживших дафний.
Проба считается сильно токсичной, если за 24 ч в ней гибнут 50% и более дафний.При гибели в контрольном варианте более 10% результаты не учитывают и повторяют опыт.