826

У котят при первичном обследовании были диагностированы значительные нарушения гематологической картины, проявляющиеся следующими отклонениями: превышение гематокрита на 30% по сравнению с верхней физиологической нормой; трѐхкратное увеличение СОЭ, лейкопения со снижением среднего показателя по группе примерно на 30%. На фоне лейкопении развивается нейтропения преимущественно за счѐт сегментоядерных клеток. Такая иммуносупрессия характерна для острых вирусных инфекций и обычно сопровождается реактивным лимфо-и моноцитозом. В нашем случае лимфоцитоз являлся как абсолютным, так и относительным и сопровождался увеличением подчелюстных лимфоузлов.

Отследив данные повторных гематологических исследований, нами отмечено, что у животных контрольной группы к 5-му дню эксперимента количество палочкоядерных нейтрофилов не изменилось, а количество сегментоядерных нейтрофилов возросло лишь незначительно. Эти данные говорят о продолжении иммуносупрессии, не смотря на оказанное лечение. На 10 день эксперимента в опыте остались только четверо котят (50% от исходного количества), гематологические показатели которых имели значительный статистический разброс. Четверо котят было выведено из эксперимента - двое по причине развившихся осложнений и два котѐнка погибли на 6 и 8 дни опыта от пневмонии при прогрессирующих явлениях дыхательной недостаточности.

Вопытных группах на 5-й день терапии мы наблюдаем достоверное снижение процента палочкоядерных нейтрофилов и повышение сегментоядерных. Однако, у котят 1-й опытной группы, в терапию которых был включѐн препарат «Миксоферон» оставались частичные нарушения гематологических показателей, например, повышение содержания моноцитов и лимфоцитов при продолжающейся лейкопении. В дальнейшем два животных были выведены из эксперимента по причине развившихся осложнений. Оставшиеся 6 животных провели в стационаре 10 дней и были признаны клинически здоровыми после повторного отрицательного результата на наличие вируса FHV-1.

Вгруппе животных, получавших рекомбинатный интерферон «Фелиферон» к 5-му дню эксперимента мы наблюдаем достоверное изменение гематологических показателей, приближающихся к физиологическим границам. У котят, получавших препарат «Фелиферон» на третий-четвѐртый день терапии имел место палочкоядерный нейтрофилѐз с параллельным снижением содержания зрелых сегментоядерных лейкоцитов, однако в течение последующих нескольких дней количество палочкоядерных нейтрофилов начинало снижаться и к 10-му дню лечения находилось на верхней границы физиологических норм. СОЭ держалось высоким так же первые три-четыре дня, а затем прогрессивно снижалось и упало к 8 дню до 13+2 мм/ч. Все животные были признаны клинически здоровыми и выписаны на 8-й день, результаты ПЦР-диагностики у всех отрицательны.

Выводы. Таким образом, на основании проведѐнного эксперимента было установлено, что применение препарата «Фелиферон» при остром течении герпесвирусной инфекции кошек предотвращает развитие вторичных осложнений, препятствует летальному исходу от основной болезни и в 2 раза ускоряет период восстановления животных.

Литература 1. Бессарабов Б. Ф., Инфекционные болезни животных [Текст ]/ А. А. Ва-

шу тин, Е. С. Воронин и др.; Под ред. А. А. Сидорчука. — М.: КолосС, 2007. —

111

671 с., л. ил. — (Учебники и учеб. пособия для студентов высш. учеб. заведе-

ний).ISBN 978-5-9532-0301-2

2.Зелютков, Ю.Г. Инфекционные болезни кошек [Текст ]/ Ю.Г. Зелютков

–Витебск – 2003.

3.Gaskell R., Knowles J. Feline respiratory disease Update. In Practice. 1989;11:23–26.

4.Gaskell R.M., Wardley R.C. Feline viral respiratory disease: a review with

particular reference to its epizootiology and control. J. Small. Anim. Pract. 1977;19(1):1–16

5.Harbour D.A., Howard P.E., Gaskell R.M. Isolation of feline calicivirus and feline herpesvirus from domestic cats 1980 to 1989. Vet. Rec. 1991;128(4):77–80

6.Henzel.A , Sperotto Brum M., Lautert C. , Martins M., Lovato L,. Weiblen R. Isolation and

identification of feline calicivirus and feline herpesvirus in Southern Brazil. Braz J Microbiol. 2012 AprJun; 43(2): 560–568.

7. Veterinary Disaster Medicine: Working Animals// Wayne E. Wingfield, Sherrie L. Nash, Sally B. Palmer, Jerry J. Upp. Willey-Blackwell,2009.

УДК 636.2.053:615.272.6:612.017.1

А. В. Кляпнев, аспирант; В. И. Великанов, д-р биол. наук, профессор; С. С. Терентьев, аспирант,

ФГБОУ ВО Нижегородская ГСХА, г. Нижний Новгород, Россия. Л. В. Харитонов, д-р биол. наук, ФГБНУ ВНИИФБиП, г. Боровск, Россия

ФИЗИОЛОГО-БИОХИМИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ КРОВИ НОВОРОЖДЕННЫХ ТЕЛЯТ

ПОД ДЕЙСТВИЕМ ДИПЕПТИДА ТИМОГЕНА

Аннотация. Подкожное введение дипептида тимогена новорожденным телятам двукратно по 100 мкг в первый час после рождения и через 4-5 часов улучшило морфологический и биохимический состав крови, и способствовало повышению прироста живой массы опытных телят по сравнению с контрольными.

Ключевые слова: новорожденные телята, иммуноглобулины, неспецифическая резистентность, дипептид тимогена, колостральный иммунитет.

Одним из резервов увеличения продуктивности сельскохозяйственных животных является повышение их резистентности, особенно в условиях несбалансированного кормления и нарушений технологии содержания.

Несмотря на множество препаратов предложенных для указанных целей, преимущество имеют вещества природного происхождения, которые участвуют в процессах жизнедеятельности: витамины, коферменты, макро- и микроэлементы, пептиды, и многие другие вещества. Сюда же относятся и аминокислоты, выполняющие в организме не только пластическую и энергетическую роль, но и регуляторную функцию. Аминокислоты, их соли и смеси и производные как препараты метаболической фармакотерапии характеризуются безвредностью, малой выраженностью побочных эффектов и отсутствием аллергизирующего влияния. Во многих случаях они являются средствами патогенетической профилактики и терапии. [6]

112

Проведенными ранее исследованиями установлено участие ряда аминокислот в регуляции процессов пищеварения, межуточного обмена и неспецифической резистентности у телят и отработаны способы применения препаратов аминокислот для этих целей. У новорожденных телят аминокислоты глицин, глутамат, таурин, орнитин, введенные перорально или парентерально, повышают интенсивность всасывания иммуноглобулинов молозива в кишечнике, ускоряют становление естественной резистентности. [3,4,13]

В регуляции неспецифической резистентности и иммунитета участвуют также производные аминокислот, в том числе пептиды. [5, 12, 14, 15] Преимущество пептидов перед препаратами аминокислот, вероятно обусловлено их гормоноподобной активностью, большей устойчивостью к расщеплению; особенно устойчивы пептидные связи с аспаргиновой и глутаминовой кислотой, что важно при парентеральном применении препаратов.

Для проведения исследований был выбран дипептид тимоген (глутамилтриптофан). Глутаминовая кислота, входящая в его состав, относится к группе аминокислот, способных ускорять дифференцировку предшественников Т-клеток в Т-лимфоциты и усиливать ответ на гетерологические эритроциты in vitro на спленоцитах и в опытах на лабораторных животных. [2] Дипептид тимогена вызывал гуморальный иммунный ответ у тимэктомированных мышей, увеличивал содержание циклических нуклеотидов в спленоцитах, усиливал хемотаксис и фагоцитоз нейтрофилов, стимулировал регенерацию печени у крыс после частичной гепатэктомии и при экспериментальном циррозе.

Тимоген является официнальным препаратом и используется в медицине, а также в животноводстве и ветеринарии; считается, что его основное действие состоит в стимуляции дифференцировки предшественников Т-клеток в Т- лимфоциты.

Препарат применяют для стимулирования регенерации тканей при воспалительных заболеваниях, трофических нарушениях, поражениях кожи и слизистых оболочек, последствиях воздействия термических и химических факторов, сопровождающихся нарушением репаративных процессов. [12]

Целью настоящих исследований стало изучение влияния дипептида тимогена на физиолого-биохимические показатели крови новорожденных телят.

Материалы и методы. Работа выполнена в весенне-летний период (майавгуст) 2015 года на молочно-товарной ферме сельскохозяйственного производственного кооператива «Мир» Дальнеконстантиновского района Нижегородской области. Объектами исследования были отобранные по принципу пар аналогов 16 новорожденных телят черно-пестрой породы, которые были разделены на 2 группы – контрольную и опытную. Телятам опытной группы дипептид тимогена инъецировали подкожно двукратно по 100 мкг в первый час после рождения и через 4-5 часов. Животным контрольной группы вводили подкожно физиологический раствор хлористого натрия по той же схеме. Пробы крови отбирали через 1 и 10 суток после рождения. У телят каждой группы в ходе проведения научнохозяйственного опыта определяли следующие показатели:

- Гематологические – подсчет количества эритроцитов и лейкоцитов пробирочным методом в камере Горяева, количество гемоглобина по методу Сали,

113

выведение лейкоцитарной формулы путем подсчѐта в мазках крови лейкоцитов разных видов, окрашенных по Романовскому-Гимза.

-Биохимические – исследование в сыворотке крови животных уровня общего белка, мочевины и глюкозы выполнялись методами, изложенными в биохимическом справочнике, подготовленном во ВНИИФБиП [10].

-Иммунологические – определение бактерицидной активности сыворотки крови – с применением тест культуры Staphylococcus epidermidis в модификации (Смирнова, Кузьмина, 1966); лизоцимной активности – с использованием тест культуры Micrococcus lysodeikticus в модификации УНИИЭВ.

-Статистическая обработка полученных материалов проводилась методом парных сравнений [1]

Анализы выполнялись на кафедре «Анатомия, хирургия и внутренние незаразные болезни» Нижегородской ГСХА, в лаборатории белковоаминокислотного питания (ВНИИФБиП), лаборатории «Гемохелп» Нижний Новгород.

Результаты исследований. Результаты, полученные в ходе опыта, показали, что через сутки после внутримышечного введения новорожденным телятам дипептида тимогена уровень иммуноглобулинов в крови у них был на 37,6% (P<0.05) выше, чем у контрольных животных, что вероятно, связано с изменением интенсивности всасывания этих белков из молозива. Известно, что поступление иммуноглобулинов молозива осуществляется у новорожденных телят в основном

впервые сутки после рождения и особенно – в первые часы посредством пиноцитоза. Повышенный уровень иммуноглобулинов в крови телят опытной группы сохранился и через 10 дней после введения препарата (+23,9%, P<0.05). Некоторое увеличение концентрации иммуноглобулинов в крови телят контрольной группы на 10 день опыта (+10,4%) может быть связано с тем, что через неделю после рождения у телят слизистая оболочка тонкого кишечника способна синтезировать т.н. секреторные защитные иммуноглобулины. [7]

Одновременно у телят опытной группы отмечена тенденция повышения в крови уровня общего белка, гемоглобина и глюкозы. При втором анализе крови телят различия наблюдались лишь по содержанию общего белка и гемоглобина, при некотором снижении концентрации мочевины и глюкозы.

У телят опытной группы, через 1 сутки после рождения отмечен более высокий уровень эритроцитов (+16,18%) и лейкоцитов (+25,67%, Р<0,05) в крови по сравнению с интактными животными.

Выявленные различия морфологических показателей крови у животных опытных групп нашли отражение в показателях неспецифической резистентности. Лизоцимная активность крови у телят опытной группы на 1 сутки была выше на 13,4% (P<0,05%), чем в контроле. Бактерицидная активность сыворотки крови, показывающая суммарное действие гуморального и клеточного звеньев защиты, была выше у телят опытной группы на 12,5 % (P<0,05%), чем в контроле на 1 сутки.

При повторном исследовании крови по отмеченным показателям на 10 сутки после начала опыта различия с контрольной группой у опытных животных несколько сгладились. Выровнялся уровень лейкоцитов в основном за счет увеличения количества лимфоцитов, но при этом снизилось содержание сегментоядер-

114

ных нейтрофилов, что привело к изменению показателей неспецифической реактивности.

Стимуляция неспецифической резистентности телят введением подкожно дипептида тимогена способствовала повышению прироста живой массы телят на 13,7 % в сравнении с контрольной группой (457 г/сут и 520 в контроле и опыте) в молочный период выращивания за 2 месяца наблюдения.

Заключение. Внутримышечное двукратное введение водного раствора тимогена новорожденным телятам в дозе 100 мкг в первый и 5-6 часы после рождения оказало заметное благоприятное влияние на организм опытных телят. При этом характерным является повышенный уровень иммуноглобулинов крови через сутки по сравнению с контрольными животными (P<0,05). Эти различия сохранились и через 10 дней после введения препарата, хотя в меньшей степени. Полученные данные позволяют считать, что у новорожденных телят тимус участвует в регуляции всасывания иммуноглобулинов и других важных компонентов молозива, поскольку препарат тимоген, выделенный из железы, привел к существенному повышению уровня иммуноглобулинов в крови телят.

Литература 1. Асатиани, В.С. Новые методы биохимической фотометрии / В.С. Асатиани, М.: 1965.-

543 с.

2.Белокрылов, Г.А. Аминокислоты как стимуляторы иммуногенеза / Г.А. Белокрылов, И.М. Молчанова, Е.И. Сорочинская // Доклады АН СССР. – 1986. - №2. – С. 289-293.

3.Великанов, В.И. Состояние неспецифической резистентности новорожденных телят под воздействием препаратов аминокислот / В.И. Великанов, И.С. Шумов, М.А.Маслова, Л.В. Харитонов // Мат . 18-й межд. конф.: Новые фармакологические средства в ветеринарии. СПб, 2006, С. 49-50.

4.Великанов В.И. Морфологические показатели крови телят под действием дипептида тимогена и его сочетание со стимулятором лейкопоэза / В.И. Великанов, А.И. Мосеева, Л.В. Харитонов // Материалы 5 Международного съезда фармакологов и токсикологов ЕАЭС: «Актуальные проблемы и инновации в современной ветеринарной фармакологии и токсикологии». – Витебск,

2015.- С.211-214

5.Воробьев, А.А. Иммунобиологические препараты: настоящее и будущее / А.А. Воробьев, В.А. Лященко // ЖМЭИ, 1995, № 6, С. 105-111.

6.Западнюк, В.И. Аминокислоты в медицине / В.И. Западнюк, Л.П. Купраш, М.У. Зайка, И.О. Безверхая.- Киев.- 1982

7.Карпуть, И.М. Иммунология лактации при аутоиммунных заболеваниях и ее роль в этиопатогенезе диспепсии новорожденных телят / И.М. Карпуть, Л.М. Пивовар // Вестник АН БССР, сер. с.-х. науки.- 1982.- № 4. – С.108-110.

8.Коваленко, Я.Р. Формирование иммунобиологического статуса у молодняка сельскохозяйственных животных / Я.Р. Коваленко // Вестник с.-х. науки.- 1979.- №2. – С. 50-58.

9.Кондрахин, И.П. Клиническая лабораторная диагностика в ветеринарии: Справочное издание / И.П. Кондрахин, Н.В. Курилов, А.Г. Малахов и др.. М.: Агропромиздат, 1985. - 287 с.

10.Методы биохимического анализа. Справочное пособие (под ред. акад. Б.Д. Кальницкого). Боровск, 1997.

11.Смирнов, В.С. Тимоген в животноводстве и ветеринарии / В.С. Смирнов.- СПб.: Меди- ко-биол. НПК, 2005. - 36 с.

12.Хавинсон, В.Х. Пептидергическая регуляция гомеостаза / В.Х. Хавинсон, И.М. Кветной, И.П. Ашмарин // Успехи современной биологии. – 2002. - № 41. С. 83-96

13.Харитонов, Л.В. Влияние препаратов аминокислот на функциональное состояние и неспецифическую резистентность телят / Л.В. Харитонов, И.Л. Кузнецов, Е.А. Пронькина, В.И. Великанов // Труды ВНИИФБиП. – 2002.- № 41.- С. 83-96

14.Goldstein, A.L. Purification and biological activity of thymosin, a harmone of thymus gland / A.L. Goldstein, G.H. Cohen, M.M. Zatz // Proc. Natl. Acad. Sci. USA.- 1972.- №69.- P. 1800-1803.

15.Miller, J.F. Immunologic function of thymus / J.F. Miller // Lancet. – 1961. -№ 2. – P. 748-749

115

УДК 636.064

И. А. Кудреватых, аспирант; О. И. Ольшевская, Н. Н. Шумилина, профессор, ФГБОУ ВО МГАВМиБ – МВА им. К.И.Скрябина.

ИЗУЧЕНИЕ ТИПА КОНСТИТУЦИИ И ЖИВОЙ МАССЫ КРОЛИКОВ ОТЕЧЕСТВЕННЫХ ПОРОД

В ГЕНОФОНДНОМ ХОЗЯЙСТВЕ ЗАПАДНОГО УРАЛА

Аннотация. В статье приведен сравнительный анализ показателей экстерьера половозрелых кроликов двух пород советская шиншилла и белый великан по живой массе и индексу сбитости. Кролики породы белый великан незначительно превосходят по живой массе кроликов породы советская шиншилла, по индексу сбитости наблюдается обратная картина. Живая масса перечисленных пород ниже существующего стандарта, а индекс сбитости выше. Следовательно, селекция в хозяйстве велась на мясной тип телосложения.

Ключевые слова: Советская шиншилла, белый великан, живая масса, индекс сбитости, порода, генофондное хозяйство.

Введение. Породы советская шиншилла и белый великан являются одними из лучших отечественных пород кроликов. Их поголовье наиболее многочисленно в районе Западного Урала. Породы были зарегистрированы: белый великан в 1924 году, а советская шиншилла в 1963 году. Последняя инструкция по бонитировке была издана в1988 году. В процессе селекции, которая была направлена на повышение продуктивных качеств, животные изменились. Поэтому требуется обследование современного поголовья двух пород.

Материал и методы исследования. Исследования по сравнительному анализу экстерьера кроликов пород белый великан и советская шиншилла проводились в 2016 году в генофондном хозяйстве Западного Урала ООО ЖЦ «Прикамье». Методом аналогов было отобрано 4 группы половозрелых кроликов самцов по 30 голов и самок по 30 голов каждой породы. Живую массу определяли путем взвешивания на весах марки МИДЛ 6001 с точностью до 0,1 г. Длину тела, обхват груди за лопатками, измеряли мерной лентой по общепринятой методике. Индекс сбитости определяли путем деления обхвата груди за лопатками на длину туловища.

Обсуждение полученных результатов. Анализируя полученные результаты табл.1 мы видим, что индекс сбитости самок породы белый великан - 63,2%, то есть превосходит показатель стандарта породы (55%) на 8,2%. У самцов средний индекс сбитости - 67,1, выше, чем у самок и превосходит стандарт породы на 12,1 %.

Таблица 1

Показатели величины индекса сбитости и живой массы у самцов и самок породы белый великан

116

Живая масса самок кроликов этой породы в данном хозяйстве равна 4,7 кг, то есть ниже стандарта породы (5,1 кг) на 0,4 кг. Самцы имели среднюю живую массу 4,8 кг., то есть ниже стандарта породы на 0,3 кг (табл.1). Самцы превосходят самок по живой массе, но разница не достоверна.

Коэффициент вариации показывает, что вариабельность индекса сбитости небольшая (5,3% -7,6%) и стадо по этому показателю однородно. По живой массе мы наблюдаем большее варьирование признака 10,7%-12,8%, следовательно, по данному признаку стадо не однородно. Наибольшим генетическим разнообразием по индексу сбитости отличались самки хозяйства, а по признаку живой массы – самцы.

Средний индекс сбитости самок породы советская шиншилла равен - 66,2%, то есть больше показателя стандарта породы -56% на 10,2%. У самцов средний индекс сбитости 67,2% больше стандарта породы - 64% на 3,2 %. По индексу сбитости самки и самцы кроликов породы советская шиншилла превосходят самцов и самок кроликов породы белый великан, но разница не достоверна.

Анализ живой массы кроликов породы советская шиншилла показал, что у самок средняя живая масса 4,676 кг, то есть ниже стандарта породы (5,0 кг) на 0,324 кг., у самцов на 0,239 кг (табл.2). Самки и самцы породы Белый великан превосходят самок и самцов породы советская шиншилла, но разница не достоверна.

Наибольшей вариабельностью по обоим признакам отличались самки породы, советская шиншилла, имея показатели коэффициента изменчивости 8,0 % и 10,6% против 4,8% , 7,67% у самцов соответственно.

Таблица 3

Показатели типов телосложения самцов и самок породы советская шиншилла и белый великан, см

Изучение типа телосложения у кроликов породы советская шиншилла показало, что 23 кролика можно отнести к эйрисомному типу телосложения (37%) и 35% к мезосомному, а по кроликам белый великан всего 9 голов эйрисомного типа, что составило 15% и 25% мезосомного от общего поголовья самцов и самок

117

(табл.3). Среди особей породы белый великан большое количество животных лептосомного типа конституции 36 голов, что составило 60%, у советской шиншиллы только 28%. Следовательно, кролики породы советская шиншилла будут обладать лучшими мясными качествами.

Выводы.

1.По показателям живой массы самцы и самки кроликов породы белый великан превосходят животных породы советская шиншилла, однако разница недостоверна, но отстают от показателей стандарта породы.

2.Установлено, что индексы сбитости у самок и самцов кроликов пород белый великан (63,2%, 67,1%) и советская шиншилла (66,2%, 67,2) превосходят стандарты пород, что говорит о селекции направленной на увеличение мясной продуктивности изучаемых пород.

3.Кролики породы советская шиншилла превосходят по индесам сбитости кроликов породы белый великан.

4.В группе кроликов породы белый великан преобладают животные с лептосомного типа телосложения -60%, в группе советская шиншилла – эйрисомного и мезосомного – 37% и 35%соответственно.

Литература

1.Балакирев, Н. А., Тинаева, Е. А., Тинаев, Н. И., Шумилина Н. Н. «Кролиководство» / Под ред.Балакирева Н. А.. — ил. — М.: КолосС, 2007. — 237 с.

2.Балакирев, Н.А., Нигматулин, Р.М. Разведение кроликов – М.: ГЭОТАР – Медиа, 2014

–592 с.

3.Кузнецов, Г.А, Мирошниченко, Т.К. Наставление по племенной работе на кролиководческой ферме М.: - Агропромиздат, 1988 – 40 с.

УДК619:616. 15: 619:616 – 097

В В. Кузнецов, д-р ветеринар. наук, профессор; Е. А. Кузнецова, канд.ветеринар. наук, доцент,

ФГБОУ ВО Чувашская ГСХА, г. Чебоксары, Россия

ИЗУЧЕНИЕ ГЕМАТОЛОГИЧЕСКИХ ПОКАЗАТЕЛЕЙ КРОЛИКОВ ПРИ ПРИМЕНЕНИИ ПРЕПАРАТА ЯП-3 В ПРОИЗВОДСТВЕННЫХ УСЛОВИЯХ

Аннотация. В статье приведены данные о положительном влиянии иммуностимулятора ЯП-3 на гематологические показатели кроликов в производственных условиях. При введении иммуностимулятора ЯП-3 количество эритроцитов в опытной группе увеличено, после первого введения на 3,2%, после и второго и третьего на 4,8%, гемоглобин возрастал на 2,3, 12,0 и 15,0% соответственно. Лимфоциты в опытных животных повышены после каждого введения препарата на 21-е сутки – 0,3, 42-е – 1,2 и 63-и – 1,5% соответственно.

Ключевые слова: кролики, иммуностимулятор ЯП-3, гематологические показатели, лейкоцитарная формула.

Кролиководство - одна из перспективных отраслей животноводства, поставляющая диетическое мясо. Кролики отличаются скороспелостью и высокой интенсивностью размножения, благодаря чему в сравнительно короткий срок

118

можно получить значительное количество мяса. Кроличье мясо относится к так называемому белому мясу, имеет мягкую мелкозернистую структуру, бледнорозового цвета. Оно легко переваривается и на 90% усваивается организмом человека.

Материалы и методы. Работа проведена в условиях крестьянскофермерского хозяйства на 50 кроликах. Были созданы две группы: опытная и контрольная, по 25 кроликов в каждой группе, группы подбирались с учетом возраста, породы и живой массы по 2,5 кг. Иммуностимулятор ЯП-3 вводили опытной группе внутримышечно, трехкратно с интервалом 21 день, в дозе по 100,8 мг/кг. Кроликам контрольных групп вводили физиологический раствор внутримышечно в таких же дозах, в тех же интервалах.

Результаты исследования. У кроликов проведены следующие исследования: гематологические показатели: эритроциты, лейкоциты, гемоглобин, СОЭ, лейкоцитарная формула[1, 2] до введения препаратов и через 21, 42 и 63 сутки общепринятым методам, в условиях лаборатории ЧГСХА.

Из приведенных данных в табл. 1 видно, что до введения препарата

Таблица 1

Определение количества эритроцитов, лейкоцитов и гемоглобина кроликов

ЯП-3 количество эритроцитов в опытной группе увеличено, после первого введения на 3,2%, после и второго и третьего на 4,8% по сравнению с фоновыми показателями. Однако после третьего введения этот показатель был на уровне второго введения и составлял 6,6 1012/л. В контрольной группе кроликов наблюдали повышение этого показателя на 1,6% по сравнению с фоновыми показателями на 42-е и 63-и сутки исследований.

119

Количество лейкоцитов увеличены, по сравнению с контрольной группой животных, но показатели были в пределах физиологической нормы. В опытной группе кроликов содержание лейкоцитов на 21-е и 42-е сутки исследований повышено на 3,6%, на 63-и сутки – 2,4% соответственно. Возрастание этого показателя в опытной группе по сравнению с животными контрольной группы незначительно и составляло 3,6, 2,4и 1,2% соответственно, в зависимости от срока исследований.

Количество гемоглобина увеличивалось после каждого введения препарата. За время опыта этот показатель возрастал в опытной группе по сравнению с контрольными животными на 2,3, 12,0 и 15,0% соответственно, а по сравнению с фоновыми данными после первого введения препарата количество гемоглобина повышено – на 1,5% после второго – 11,4% и после третьего – 14,4% соответственно. Кроликов контрольной группы количество гемоглобина в снижалось, но было в пределах физиологической нормы.

Значительных изменений в скорости оседания эритроцитов при проведении исследований не наблюдалось и в среднем составило 2,3 мм/час.

Изучая лейкоцитарную формулу (табл. 2), в опытной группе кроликов значительных сдвигов не выявлено, но наблюдали незначительное снижение и повышение отдельных форм лейкоцитов.

Количество базофилов в опытной группе кроликов табл. 2 повышалось после первого введения препарата ЯП-3 на 0,2% по сравнению с фоновыми исследованиями, и этот показатель был на уровне 21-х суток до конца опыта. В контрольной группе он снижен по сравнению с фоновыми данными на 0,1% на 21 сутки, и на 0,2% на 42-е и 63-и сутки исследований соответственно.

120