Иммунитет.
При внутриутробном развитии плод получает от матери антитела класса IgG к некоторым антигенам B. pertussis. Однако материнские антитела практически у всех детей исчезают к 6-месячному возрасту. После перенесенного заболевания формируется напряженный и стойкий длительный иммунитет, обусловленный гуморальными и клеточными механизмами.
Микробиологическая диагностика.
Исследуемым материалом служит слизь из верхних дыхательных путей.
Материал для исследования отбирают методом “кашлевых пластинок” или с помощью тампона с задней стенки глотки. Слизь со слизистой оболочки можно также отбирать с помощью шприца и тонкого пластикового катетера. Метод “кашлевых пластинок” заключается в том, что во время кашля ко рту больного на расстоянии не более 10 см подносят открытую чашку Петри с питательной средой. Чашку держат в течение 6-8 кашлевых толчков, затем закрывают крышкой и помещают в термостат. Увлажненные тампоны доставляются в лабораторию не позднее 3 часов с момента взятия материала в специальных термоконтейнерах. Для доставки материала в лабораторию используют транспортную среду Эймса (Amies) - модифицированную среду Стюарта.
Бактериологический метод.
Выделение возбудителя возможно только в ранние сроки – в первые 2 недели заболевания. Для выращивания культуры используют среду Борде-Жангу, молочнокровяной агар, КУА, бордетелагар (аналог КУА), угольно-кровяной агар (среда Regan-Lowe). Для подавления роста сопутствующей микрофлоры в среду добавляют пенициллин. Чашки с посевами инкубируют в термостате при 37ОС в течение 2-3 суток. При наличии характерных колоний из них готовят мазки, которые окрашивают по Граму и микроскопируют. Кроме этого проводят реакцию агглютинации. Для постановки реакции агглютинации выпускаются сыворотки диагностические коклюшные к агглютиногенам 1, 2, 3. В связи с медленным ростом возбудителя коклюша посевы инкубируют в течение 5-7 суток. Предварительный ответ может быть получен на 3-5 сутки, окончательный – на 5-7 сутки.
В качестве ускоренного метода применяют реакцию иммунофлюоресценции (РИФ) с материалом из зева больного и коммерческой флюоресцентной сывороткой. Исследование проводят с помощью люминесцентного микроскопа. РИФ позволяет получить ответ через 4-6 часов после взятия материала.
Серологический метод.
Серологические методы используют как вспомогательные при выявлении атипичных форм болезни, а также для ретроспективной диагностики, поскольку антитела к возбудителю появляются не ранее третьей недели заболевания. Поэтому серологические методы позволяют подтвердить диагноз коклюша у больных, кашляющих более 2-3 недель.
ИФА к коклюшному токсину и филаментозному гемагглютинину или РА, РНГА. При этом у неиммунизированных лиц наблюдается сероконверсия (повышение титра антител в 2-4 раза), а у вакцинированных лиц сероконверсия не выявляется, так как к моменту исследования возникает вторичный иммунный ответ. Серологические исследования необходимо проводить в динамике со 2-3 недели болезни с интервалом 1-2 недели.
ПЦР.
Лечение и профилактика.
При лечении коклюша основное внимание уделяется тщательному уходу за больными, устранению провоцирующих кашель факторов, ингаляции увлажненного кислорода, отсасыванию слизи из дыхательных путей, использованию бронхорасширяющих, откашливающих средств, антигистаминных препаратов. Антибиотики (эритромицин, азитромицин, кларитромицин, тетрациклин, левомицетин, гентамицин) оказываются эффективными только в катаральный период.
С целью специфической профилактики коклюша используют комплексные препараты, содержащие убитые коклюшные бактерии (корпускулярный коклюшный компонент) или отдельные антигены возбудителя коклюша (бесклеточный коклюшный компонент).
Больного коклюшем изолируют на 25-30 дней с момента заболевания. Карантин сроком на 14 дней устанавливают для детей до 7 лет, бывших в контакте с 352 больным и ранее не болевших коклюшем. В очаге заболевания проводят текущую дезинфекцию. Неиммунизированным детям при контакте с больным вводят противококлюшный человеческий иммуноглобулин. Всем лицам, контактировавшим с больным, независимо от возраста и наличия в анамнезе вакцинации, проводят антибиотикопрофилактику эритромицином. С целью раннего выявления больных при наличии характерного кашля, продолжающегося в течение 5-7 дней и более, проводят двукратное бактериологическое обследование детей и работников родильных домов, детских больниц, санаториев, детских дошкольных учреждений, школ.
Таксономическое положение и морфология возбудителей туберкулеза (виды туберкулезных микобактерий и их дифференциация). Особенности химического состава возбудителей туберкулеза. Основные биологические свойства микобактерий туберкулеза, питательные среды для их культивирования, особенности роста. Методы микробиологической диагностики туберкулеза, ускоренная диагностика. Аллергические пробы при туберкулезе.
Таксономия
Микобактерии относятся к домену Bacteria, типу (филуму) Actinobacteria, классу Actinobacteria, порядку Corynebacteriales, семейству Mycobacteriaceae, роду Mycobacterium. Туберкулез у человека может быть вызван следующими видами микобактерий: M. tuberculоsis (палочка Коха, человеческий вид - вызывает заболевание в 92% случаев), М. bоvis (бычий вид - вызывает заболевание в 5% случаев), М. аfriсаnum (промежуточный вид - вызывает заболевание в 3% случаев, распространен в Южной Африке).
Микобактерии, патогенные для человека и животных и вызывающие у них туберкулез, являются микобактериями туберкулезного комплекса (Mycobacterium tuberculosis complex - МТВС). Этот комплекс включает следующие виды: M. tuberculosis, M. bovis, M. bovis BCG, M. africanum, M. canetti, M. caprae, M. microti, M. pinnipedii. M. microti является вариантом M. tuberculosis, адаптированным к 615 организму мышей, а M. canetti представляет собой вариант M. tuberculosis, образующий гладкие колонии. Микобактерии, патогенные для человека и животных и вызывающие у них диссеминированные процессы внелегочной локализации, являются микобактериями avium-комплекса (МАС). В состав этого комплекса входят M. avium, M. avium paratuberculosis, M. avium silvaticum, M. avium hominissuis, M. colombiense.