789

Таблица 1

Оценка эмбриональной смертности

У категорий яйца «неправильной формы» и «мраморное» высокий процент «кровь-кольцо»; «задохликов» – у категорий яйца «неправильной формы», «мраморное» и «крупное» (свыше 81 г); боя – у категории «крупное» яйцо. Объясняется тем, что крупное яйцо птица сносит в возрасте старше 390 дней, а с возрастом скорлупа становится хрупкой.

Анализируя данные таблицы 2, можно сделать вывод, что самая низкая оплодотворенность у категории «крупное яйцо». Основная причина – возраст птицы (старше 390 дней). Выводимость и процент вывода ниже норматива у всех категорий дефектного яйца.

При дальнейшем контроле за ростом и развитием молодняка в 7 и 14 дней было установлено, что молодняк из категорий яйца:

-«неправильной формы» весит меньше на 2 г в 7 дней и на 20 г в 14 дней;

-«мраморное» в 7 дней меньше на 5 г, а в 14 дней в норме 430 г;

-«крупное» свыше 75 г и 81 г в 7 дней на 5 и 4 г выше плановой нормы (170 г) соответственно, а в 14 дней выше плановой нормы (430 г) на 5 и 10 г соответственно;

-«с внутренней насечкой» в 7 дней ниже плановой нормы (170 г) на 5 г, а в 14 дней на 5 г выше нормы (430 г).

Исходя из полученных данных, следует, что живая масса молодняка из категории яйца «неправильной формы» и «мраморное» имеет незначительное отклонение от планового норматива, а молодняк из категории яйца «крупное» и «с внутренней насечкой» в норме и даже выше плановой нормы. В течение двух

181

УДК 636.598:637.4:614.484:(470.53)

О.С. Микрюкова,

ФГБОУ ВПО Пермская ГСХА, г. Пермь, Россия

ДЕЗИНФЕКЦИЯ ГУСИНЫХ ЯИЦ В ФЕРМЕРСКОМ ХОЗЯЙСТВЕ

В промышленном птицеводстве на сегодняшний день известно много средств для санации объектов зоотехнического контроля инкубаториев. Они обладают различной эффективностью, токсичностью и различаются стоимостью, поэтому на практике применяются наиболее перспективные. В статье приведены данные опытов по применению новых антисептиков при санации инкубационных яиц в условиях фермерских хозяйств.

Ключевые слова: инкубация, дезинфекция, бактериальная обсемененность, выводимость.

Соблюдение гигиены в инкубаториях – очень важное составляющее для вывода птиц. Только согласованная система мероприятий вместе с высококачественными препаратами создает условия, при которых можно получать здоровых птиц, снижая затраты.

Инкубаторий – самое уязвимое место в производственной цепочке птицеводческих предприятий. Он инкубирует не только эмбрионы, но и множество бактерий, являясь идеальным местом для размножения болезнетворных микроорганизмов. В нем созданы хорошие условия как для биологического объекта (эмбрион - цыпленок), так и для патогенной и условно-патогенной микрофлоры. Инкубационный (выводной) шкаф – место, где микробный потенциал может накапливаться до критических размеров, а любое заражение цыплят при выводе – всегда острый сепсис, сопровождающийся их падежом в первые сутки жизни [1, 2, 4].

Яйца обсеменяются микрофлорой эндогенным (в организме курицы) и экзогенным путями (из внешней среды). Эндогенное заражение происходит в яичнике и яйцеводе несушек, больных паратифом, тифом, микоплазмозом, пуллорозом и туберкулезом, или являющихся переносчиками возбудителей этих и других инфекций. Зародыш в данном случае погибает или же выводится больной цыпленок – источник заражения молодняка. Поэтому необходимо выбраковать из родительских стад больных или переболевших птиц, а также своевременно применять санитарно – профилактические мероприятия.

Инфицирование яиц экзогенным путем происходит через скорлупу, а точнее – через микро- и макропоры, с помощью которых внутренняя часть яйца соприкасается с внешней средой. Наиболее активно и легко такая связь осуществляется через макропоры, своего рода жизненно активные канальцы. На момент выхода из яйцевода здоровой несушки яйцо не содержит на поверхности микроорганизмов. Но после оно сталкивается со многими опасностями:

Микрофлора наиболее активно затягивается в поры яичной скорлупы в первые 1-2 ч после снесения яиц (вместе со слизью, покрывающей скорлупу);

Яйца укладываются на поддоны или картон, к сожалению, часто загрязненными;

Дополнительная контаминация происходит в помещении для хранения и в машинах, перевозящих яйца в инкубатор, где они еще раз могут подвергнуться заражению;

183

В случае несоблюдения санитарно-гигиенических норм обслуживающий персонал при любой манипуляции с яйцами становится дополнительным источником обсеменения скорлупы микрофлорой;

При нарушении температурно – влажностного режима хранения яиц микрофлора с их поверхности проникает через поры вначале на подскорлупные оболочки, а затем в белок и желток.

Согласно ветеринарным правилам все яйца, поступающие на инкубацию, должны быть продезинфицированы в специально оборудованных камерах.

На сегодняшний день существует несколько видов дезинфекции: Дезинфекция азотом; Йодирование; Хлорирование;

Дезинфекция пергидридами;

Дезинфекция медным купоросом;

Дезинфекция аэрозолями;

Орошение дезсредствами;

Аэрозольная дезинфекция.

На российском и мировом рынках до настоящего времени преобладают традиционные биоцидные препараты: хлорактивные, кислородсодержащие, четвертичные аммониевые соединения, а также содержащие соли тяжелых металлов (меди, олова и др.). Однако у монокомпонентных дезсредств есть существенный недостаток – они не обеспечивают надлежащего деконтаминирующего эффекта, оставляя за собой достаточно высокое остаточное обсеменение. Это используют патогенные микроорганизмы, например, кишечная палочка, которая способна за 20 мин удваивать свою численность [5 ]. Подобные препараты чаще применяют в производстве только из-за их низкой стоимости [6].

Наиболее эффективными являются комбинированные поликомпонентные дезсредства. Они активны в отношении широкого спектра микроорганизмов; отсутствие иммуносупрессивного действия; не токсичны для животных и людей; подвержены лучшему биоразложению; пролонгированный эффект; работают в широком температурном диапазоне; широкие возможности применения реагентов.

Одной из важных причин поиска новых дезинфицирующих средств является экологическая безопасность препарата [3].

Учитывая то, что опыт проводился в частном хозяйстве, а не на специализированной птицефабрике, необходимо было заботиться о безопасности работающего персонала, а также о минимальных затратах на дезинфекцию яиц.

Входе опыта определяли бактериальную обсемененность гусиного яйца до

ипосле обработки, а также инкубационные качества яиц.

Для обработки яиц мы использовали дезинфицирующие средства «Экоцид» и «Латацин».

«Экоцид» в качестве действующего вещества содержит тройную соль пероксомоносульфата калия - 50%, а также вспомогательные вещества: ПАВ (додецилбензолсульфонат натрия), органические кислоты (яблочная, сульфамовая), неорганические буферные системы (хлорид натрия и полифосфат натрия), краситель

184

АзоДиестафф и отдушка Цитрон с запахом лимона. По внешнему виду представляет собой гранулированный порошок розовато-серого цвета со слабым запахом лимона, легко растворимый в воде. Пригодный к применению рабочий раствор препарата представляет собой прозрачную жидкость светло-розового цвета без осадка и хлопьев. Выпускают Экоцид С расфасованным в пакеты из ламинированной фольги по 50 г, упакованные по 25 штук в картонные коробки, а также в пакеты по 1 и 2,5 кг.

«Латацин» – дезинфицирующее средство с выраженными моющими свойствами в виде прозрачного раствора от желтоватого до коричневого цвета, содержащее действующие вещества: алкилдиметилбензиламмоний хлорид (6%) и N,N- бис(3-аминоприл) дедециламин(2%), полигексаметиленгуинидин гидрохлорид(2%), в качестве вспомогательных веществ:метасиликат натрия(5%), комплексоны, пеногаситель. Показатель активности водородных ионов (рН) 1% раствора средства-12 ед.

Препарат обладает выраженными моющими средствами, минимальным вредом для экосистем и биоценозов за счет наличия в составе минеральных солей и высокоактивных, биоразлагаемых неионогенных поверхностно активных веществ. Для обработки яйца готовили 0,3 % растворы, куда погружали яйцо на 3-5 минут. После чего яйцо обсыхало в течение получаса. При обработке яиц 0,3% раствором «Латацина» общая бактериальная обсемененность была 4,5*103, что меньше на 0,4*103 микробного числа по сравнению с яйцом, обработанным «Экоцидом». Бактериальная обсемененность грязного яйца составила 7,0*104.

Инкубационные качества гусиных яиц показали, что выводимость при обработке «Латацином» на 15,5% выше, чем обработанных «Экоцидом». Этот результат получен за счет снижения числа «замерших» эмбрионов на 4,4%, «задохликов» на 2% и «тумаков» на 1,4%. Общий вывод суточного молодняка при обработке «Латацином» составил 75,5%.

При расчете экономической эффективности расхода препаратов для дезинфекции, используемых в опыте, получили следующий результат.

Для приготовления 100 литров рабочего раствора необходимо 300 мл «Латацина» или 300 г «Экоцида». Цена 1 л «Латацина» составляет 83 рубля, а «Экоцида» 700 рублей за 1 кг. Таким образом, экономия для приготовления рабочего раствора для однократной обработки составляет 185,1 рубля.

Литература

1.Безусова А., Демченко М., Грачѐва Г. Селекция на повышение инкубационных качеств яиц кур кросса «Родонит» / Сборник научных трудов ВНИТИП. - Сергиев Посад, 2000. С. 27-33.

2.Бессарабов, Б.Ф., Бондарев Э.И., Столяр Т.А. Птицеводство и технология производства яиц и мяса птицы. Учебник. 2-е изд., доп. СПб: «Лань», 2005.- 96с.

3.Воинцева И., Гембицкий П. Безопасная дезинфекция: желаем мыть или красить?. Барьер безопасности. 2004. № 1. С. 33 – 36.

4.Дядичкина Л. Эмбриональная смертность птицы. Птицеводство. 2007. № 4. С. 8-9.

5.Исаев Ю.В. Влияние разных условий прединкубационной обработки яиц на вывод молодняка. Пути интенсификации производства продуктов питания птицеводства: Межвузовский сборник научных трудов.-Ленинград, 1988. С. 89-93.

6.Косенко О. В. Сравнительная оценка некоторых новых средств дезинфекции, применяемых в птицеводстве. 3-я международная конференция «Птицеводство – Мировой и отечественный опыт». Москва 2004.-104с.

185

УДК 636.4:619:579

А.Л. Мухамадьярова,

ФГБОУ ВПО Вятская ГСХА, г.Киров, Россия

ЕСТЕСТВЕННАЯ РЕЗИСТЕНТНОСТЬ ПОРОСЯТ

ИЕЕ ОПРЕДЕЛЕНИЕ В УСЛОВИЯХ ПРОИЗВОДСТВА

Встатье приведены данные определения естественной резистентности поросят в условиях производства по микрофлоре ротовой полости. Определяли наличие в ротовой полости Escherichia coli и гемолитических форм бактерий, появление которых является ранним признаком ухудшения иммунологического состояния организма.

Естественная резистентность, нормальная микрофлора ротовой полости, Escherichia coli, среда Эндо, кровяной агар, Г - палочки, Г + палочки, стрессфакторы.

Успешное развитие животноводства во многом зависит от направленного выращивания молодняка, сочетающего высокую продуктивность с устойчивостью организма к заболеваниям.

Результаты многочисленных исследований состояния естественной резистентности организма сельскохозяйственных животных свидетельствуют о том, что защитные силы являются динамичным показателем, и определяются как генетическими особенностями организма, так и воздействием различных факторов окружающей среды. Это обстоятельство позволяет направленно влиять на формирование и проявление защитных сил организма. Обеспечение животным благоприятных условий содержания, максимально отвечающих биологическим особенностям организма, сложившимся в процессе эволюционного развития, способствует более быстрому формированию и лучшему проявлению его защитных сил. Вместе с тем, неблагоприятное воздействие окружающей среды приводит к ослаблению устойчивости организма, защитные силы его проявляются недостаточно, что усиливает опасность возникновения и распространения инфекционных заболеваний.

Контроль состояния микрофлоры организма у животных позволяет своевременно корректировать нежелательные изменения важной облигатной части нормальной микрофлоры, чтобы не допустить снижения его защитных сил.

Перед нами была поставлена следующая задача: определить естественную резистентность поросят в условиях производства по микрофлоре ротовой полости.

Определение естественной резистентности организма поросят по микрофлоре ротовой полости проводилось в ЗАО «Агрофирма Дороничи» по методике И.Ф. Горлова [1]. Для бактериологического исследования использовали методические указания, утвержденные МЗ СССР 17 декабря 1984 г. № 04 – 723/3 [2].

В полости рта у здоровых свиней обитают диплококки, стафилококки, сарцины, микрококки, анаэробы, бактероиды, ацидофильные, целлюлозоразрушающие нитчатые бактерии, спирохеты, дрожжевые и плесневые грибы. При кормлении молоком преобладают молочнокислые бактерии и микрофлора молока. Количественный и качественный состав микрофлоры полости рта у поросят зависит от возраста и типа кормления. Появление в ротовой полости Escherichia

186

coli, которая отсутствует у здоровых животных, является ранним признаком ухудшения иммунологического состояния организма. На снижение уровня естественной резистентности организма животных указывает также увеличение в составе нормальной микрофлоры ротовой полости гемолитических форм бактерий.

Естественная резистентность организма определялась у поросят в возрасте 45-50 дней (цех доращивания). Поросят исследовали выборочно по 2 головы из клетки. Было взято на бактериологическое исследование 20 проб. Стерильные диски из фильтровальной бумаги (диски стерилизуются сухим жаром в сушильном шкафу в бумажных пакетах по 5 штук при температуре 150°С в течение 2 ч.) стерильным пинцетом прикладывали к поверхности слизистой оболочки ротовой полости между языком и резцами, затем диск помещали в стерильную пробирку с 5 мл физиологического раствора и встряхивали. Пинцет стерилизовали методом фламбирования над пламенем спиртовки непосредственно в цехе. Пробы брали утром до кормления.

В лаборатории содержимое пробирки с диском выливали в стерильную ступку, и затем диск растирали стерильным пестиком. Полученную суспензию в количестве 0,2 мл стерильной пипеткой наносили на поверхность питательных сред (среда Эндо, кровяной агар). Стерильным шпателем суспензию тщательно растирали по поверхности среды. Чашки ставили в термостат при температуре 37°С. Через сутки учитывали рост на питательных средах.

Данные исследований показали, что в 12 пробах отмечается рост на среде Эндо и на кровяном агаре. Рост на среде Эндо в виде изолированных колоний 2-х видов – темно-красные с металлическим блеском и розовые с интенсивно окрашенным центром. На кровяном агаре также отмечается рост разных видов колоний – круглые блестящие, матовые с гладкой поверхностью и серые с зоной гемолиза или без нее.

Из выросших колоний были приготовлены мазки и окрашены по Граму. В мазках со среды Эндо обнаружены Г- палочки, а в мазках, приготовленных с кровяного агара, Г- палочки и Г+ кокки. Для идентификации Г- палочек колонии со среды Эндо и кровяного агара были отвиты на среды Олькиницкого, Симонса и бульон, под пробку которого подвешивали индикаторную бумажку на индол.

Выделенная культура ферментирует с образованием кислоты и газа глюкозу, лактозу, сахарозу, образует индол, не образует сероводород, на среде Симонса не растет, дает положительную реакцию с метиловым красным и мочевину не расщепляет. Морфологические и биохимические свойства выделенной культуры свидетельствуют о выделении из ротовой полости поросят кишечной палочки, обладающей гемолитическими свойствами. Идентификацию кокков проводили методом посева на желточно-солевой агар, постановкой реакции плазмокоагуляции и пробой на каталазу. Выделенная культура стафилококков не обладает патогенными свойствами.

Таким образом, в результате проведения бактериологических исследований микрофлоры ротовой полости животных установлено, что у поросят в группе доращивания наблюдается снижение уровня естественной резистентности. Причиной ее снижения у поросят в данном возрасте мы считаем воздействие на организм животных различных стресс-факторов (перемещения, взвешивания, вакцинации, смена рациона и большое количество животных на ограниченной площади).

187

После проведенных исследований для повышения естественной резистентности организма в рационы поросят были включены премиксы, содержащие витамины и минеральные вещества, улучшены условия содержания. Поросятам был назначен также курс пробиотикотерапии. Поросята в течение месяца получали пробиотик бактоцеллолактин (БЦЛ), состоящий из Bac. subtilis, Lactobacillus plantarum, Ruminococcus albus. БЦЛ обладает высокой антагонистической активностью по отношению к кишечной палочке, стрептококкам, протею, стафилококкам и возбудителям дизентерии.

При повторном исследовании микрофлоры ротовой полости у поросят в этом же цехе во всех пробах рост на питательных средах отсутствовал.

Заключение. Своевременное выявление снижения уровня естественной резистентности организма животных позволяет проводить мероприятия, устраняющие неблагоприятные факторы среды и предупреждающие снижение продуктивности и отхода животных.

Литература

1.Горлов И.Ф. Определение естественной резистентности у животных // Ветеринария. 1987. №10. С. 33-34.

2.Методические указания по микробиологической диагностике заболеваний, вызываемых энтеробактериями, утвержденные МЗ СССР 17 декабря 1984 г. №04-723/3.

УДК 636.4.082

В.И. Полковникова,

ФГБОУ ВПО Пермская ГСХА, г. Пермь, Россия

ОЦЕНКА ХРЯКОВ-ПРОИЗВОДИТЕЛЕЙ ПО КАЧЕСТВУ СПЕРМЫ

ИВОСПРОИЗВОДИТЕЛЬНОЙ СПОСОБНОСТИ

ВООО «ЗОЛОТОЙ ТЕЛЕНОК» ЧАЙКОВСКОГО РАЙОНА

Результативность искусственного осеменения свиноматок в значительной степени зависит от своевременной и правильной оценки количественных и качественных показателей спермы хряков-производителей, кормления, содержания, физиологически обоснованного режима использования лучших хряков как ценного генофонда. Эффективность производства свинины во многом зависит от четкой и правильной организации воспроизводства животных.

Ключевые слова: хряк-производитель, искусственное осеменение, объем эякулята, концентрация спермы, активность спермиев, оплодотворяющая способность, многоплодие, крупноплодность.

Эффективность и интенсивность ведения отрасли свиноводства тесно связаны с организацией процессов воспроизводства. Особое место среди множества факторов интенсификации свиноводства принадлежит целенаправленному выращиванию и всесторонней оценке продуктивных качеств и отбору наилучших хря- ков-производителей, как основных особей в воспроизводстве свинопоголовья. Внедрение искусственного осеменения предъявляет серьезные требования к племенным качествам хряков.

188

Целью исследований являлось оценка хряков – производителей по качеству спермопродукции, определение эффективности их использования в товарном свиноводстве.

Для достижения поставленной цели предстояло решить следующие задачи: - провести оценку качества спермопродукции хряков-производителей; -изучить и сравнить оплодотворяющую способность спермы хряков-

производителей; - оценить воспроизводительные качества хряков-производителей.

Местом проведения научно-производственных исследований являлся свиноводческий комплекс ООО «Золотой теленок» Чайковского района.

В условиях свиноводческого комплекса работает пункт искусственного осеменения. В хозяйстве имеется 9 хряков следующих пород: ландрас, дюрок, крупная белая, йоркшир.

Результативность искусственного осеменения свиноматок в значительной степени зависит от своевременной и правильной оценки количественных и качественных показателей спермы.

Качество спермопродукции хряков – производителей определяли по следующим показателям: объем эякулята (мл), концентрация (млн/мл.) и активность спермиев (балл.):

-для микроскопической оценки применяли микроскоп с электрическим нагревательным столиком конструкции Морозова;

-после получения спермы отфильтровывали секреты куперовых желез и оценивали объем профильтрованной части эякулята.

Оплодотворяющую способность хряков-производителей определяли по хозяйственной оплодотворяемости (количество опоросов/количество случек*100). Воспроизводительные качества хряков-производителей оценивали по осемененным свиноматкам, изучив их многоплодие (гол.), массу гнезда при рождении (кг)

исреднюю массу поросенка при рождении (кг).

При сборе данных использовали следующие формы учѐта: журнал искусственного осеменения свиноматок, индивидуальные карточки хряков – производителей и свиноматок, журнал учета опоросов свиноматок.

Данные обрабатывали биометрически с использованием программного обеспечения Microsoft Excel.

Хряки - производители содержатся в отдельном корпусе. Корпус рассчитан на 12 голов и совмещен с пунктом искусственного осеменения. Площадь станка 6 м2. Для хряков организованы ежедневные прогулки. После прогулок и перед взятием спермы хряков-производителей чистят и моют под душем. Средний возраст хряков-производителей 28 мес.

В суточный рацион хряков – производителей входят: комбикорм, зерно пророщенное (пшеница), корма животного происхождения: сырые яйца, молоко. Согласно проведенному анализу рациона хрякапроизводителя выявлен недостаток в таких питательных веществах как лизин, каротин, сырая клетчатка.

На пункте искусственного осеменения семя у хряков берут раз в два дня. Период эксплуатации хряков 1,5-3 года. К чучелу хряков приучают с 5-6 месячного возраста. Используют с 8-10 месячного возраста, с массой не менее 140 кг.

189

Взятие спермы у хряков-производителей производится мануальным методом. Сперму от хряка берѐт специально обученный техник – осеменатор. Разбавляют сперму средами при активности спермиев не ниже 8 баллов, с концентрацией не ниже 100 млн. спермиев в 1 мл, через 20—30 мин после получения и определяют ее качество. После разбавления спермы проверяют ее качество.

Осеменение маток проводится с помощью прибора УКП-1. К корпусу прибора присоединяют заполненные флаконы предварительно разбавленной спермой и стерильный катетер, используя Г-образную муфту с клапаном, которую размещают между катетером и флаконом. Она позволяет размещать флакон со спермой в вертикальном верхнем положении и обеспечивать удобство в работе оператора. Расчет одной спермодозы — по 1 мл на 1 кг живой массы свиноматки (но не более 150 мл) и 3-5 млрд. прямолинейно-подвижных сперматозоидов.

Хряки выделяют за одну садку от 100 до 600 мл спермы, максимально 1000 мл. Из данных таблицы 1 видно, что у всех хряков объем эякулята составляет более 200 мл, за исключением хряка 5901 крупной белой породы (164 мл). Наибольшим объемом эякулята отличается хряк 1272 йоркширской породы – 293 мл .Густой считается сперма с концентрацией более 200 млн. спермиев в 1 мл. При оценке качества спермы хряков следует отметить их породные особенности: хряки пород дюрок и йоркшир имеют более высокую концентрацию спермы по сравнению с породами крупная белая и ландрас.

Таблица 1

Качественная характеристика спермы хряков производителей

Примечание: кбкрупная белая, д- дюрок, й- йоркшир, л- ландрас.

Активность спермы всех хряков не ниже 7 баллов. Таким образом, для разбавления и применения используется сперма всех представленных хряков. Объѐм разбавленной спермы в среднем составил 1057 мл.

Качественные показатели спермы хряков являются не единственным критерием для оценки хряков – производителей, также необходимо учитывать оплодотворяющую способность спермиев в половых путях свиноматки (табл. 2). От данного показателя зависит процент плодотворности случек и выход поросят на один опорос. По результатам проверки хряков на оплодотворяющую способность определяется эффективность использования каждого хряка. Хряков, имеющих оплодотворяющую способность ниже 80%, следует выбраковывать из стада.

190