Мухамадияров Р. Анализ фитосборов и других лекарственных форм с измельченными и порошкованными растительными компонентами

стеклянной пластинке или тарелке, где помещаются две емкости – первая с водой, вторая с объектом. В первую емкость вместо воды можно поместить несколько слоев мокрой фильтровальной бумаги. При помещении исследуемых образцов во влажную камеру необходимо исключить их соприкосновение с водой. Сырье должно находиться лишь во влажной атмосфере.

Этот способ незаменим для слизистых объектов, которые размягчаются в камере на протяжении 1–3 суток. При таком продолжительном воздействии объекты легко плесневеют, поэтому необходимо добавить в воду немного карболовой кислоты.

Отрицательным моментом этого способа является присутствие в тканях значительного остаточного количество воздуха, который приходится удалять уже из готового среза.

Непосредственно микроскопия готового микропрепарата осуществляется только после заключения его в какую-либо жидкость. Выбор жидкой среды зависит от объекта, подлежащего рассмотрению. Так, при анализе кристаллов или исследовании строения отдельных тканей применяют в качестве просветляющей жидкости хлоралгидрат или воду. Для установления строения крахмальных зерен используют только воду, так как в растворе хлоралгидрата они растворяются.

Следующий этап эксперимента заключается в выборе реактива для проведения микрохимической реакции на вещества, находящиеся в рассматриваемом объекте.

Для анатомического исследования листья, травы и цветки, цельные или резаные, кипятят в 5-процентном растворе едкой щелочи для просветления. Продолжительность кипячения зависит от толщины объекта. Затем образцы сырья переносят в небольшую фарфоровую чашку и несколько раз промывают водой, пока вода не перестанет окрашиваться в бурый цвет. После завершения промывания предметное стекло подводят под плавающий в воде кусочек сырья и вынимают его расправленным на стекле (при вытаскивании иглой или пинцетом возможно скручивание и разрывы), скальпелем отсекают небольшой кусочек, остальное сбрасывают обратно в чашку. Приготовленный таким образом кусочек разрезают пополам, одну половину переворачивают, чтобы иметь возможность рассмотреть и верхнюю, и нижнюю стороны, заключают в раствор глицерина или хлоралгидрата.

Кусочки толстых и кожистых листьев раздавливают, нажимая на покровное стекло ручкой препаровальной иглы.

Порошки листьев рассматривают в растворе хлоралгидрата после подогревания.

Диагностическими признаками для листа будут строение эпи-

дермиса и выросты на нем с эфирным маслом и включения в основной паренхиме – кристаллы оксалата кальция (рафиды, друзы, одиночные

9

кристаллы, кристаллоносная обкладка жилок, кристаллический песок), тип устьичного комплекса (аномоцитный, анизоцитный, парацитный, диацитный) (см. рис. 2, 3, 4). Клетки эпидермиса могут иметь извилистые или прямые стенки, гладкую или складчатую кутикулу (см. рис. 1).

Плоды и семена находятся или в порошкованном, или в целом виде. Диагностическими признаками для них служат: 1) строение семенной оболочки или околоплодника; 2) химическая природа запасных питательных веществ.

В случае цельных плодов и семян микроскопического исследования обычно не требуется; их подлинность можно установить по внешнему виду. Лишь изредка (в сомнительных случаях) прибегают к микроскопии.

Для приготовления препаратов из оболочки семена кипятят 1– 2 минуты в растворе едкой щелочи; после этого семенная оболочка легко расслаивается иглой на предметном стекле на отдельные слои, которые помещают в разведенный глицерин и рассматривают.

Срезы с плодов или семян делают после предварительного увлажнения, которое достигается или выдерживанием их в течение суток во влажной камере, или замачиванием на несколько дней в разведенном глицерине(при более грубых объектах). Мелкие плоские семена трудно удержать в руке при изготовлении срезов, поэтому их фиксируют при помощи пробки. Пробку кипятят и распаривают, затем надрезают на 3/4 скальпелем и, поместив в разрез семена, делают срез бритвой. Круглые семена в пробке не удержать, поэтому их помещают в парафин. Берут кусочек парафина и вкалывают в него нагретый на пламени горелки кончик иглы; парафин расплавляется, в него вносят семя, а когда парафин застынет, делают срезы бритвой через объект вместе с парафином. Затем срезы помещают на предметное стекло и рассматривают в растворе хлоралгидрата.

Кора может быть порошкованной, резаной и цельной. Важной в диагностическом отношении в коре является механическая ткань, которая представлена одревесневшими волокнами и каменистыми клетками (рис. 6). Волокна могут быть узкими и длинными или более толстыми и короткими. Иногда они лежат пучками, причем могут сопровождаться кристаллоносной обкладкой; в некоторых случаях разбросаны в основной ткани коры поодиночке или небольшими группами – по 2–3 волокна.

Каменистые клетки также могут быть расположены одиночно или группами, «гнездами».

Для приготовления препаратов из резаной коры берут соскоб и помещают его в раствор хлоралгидрата или мелкие кусочки коры кипятят 3–5 минут в 5-процентном растворе едкой щелочи, раздавливают их на предметном стекле и заключают в раствор глицерина. Цельную кору предварительно замачивают в водном глицерине или, разломив на куски длиной 1–2 см и шириной около 0,5–1 см, кипятят с водой 1–3 минуты. Размягченные куски коры подравнивают скальпелем, чтобы получить правильное поперечное и продольное сечение, и делают срезы. Последние

10

помещают в флороглюцин с крепкой соляной кислотой, а затем перекладывают в раствор хлоралгидрата или окрашивают одревесневшие ткани сульфатом анилина.

Корни и корневища тоже могут быть порошкованными, резаными или цельными. Важным в диагностическом отношении в данном случае является строение проводящих пучков и характер питательного запаса. Большинство подземных органов содержит крахмал; в этом случае характерно будет строение крахмальных зерен (см. рис. 5); корни сложноцветных часто содержат вместо крахмала инулин, а некоторые корни, например, сенеги, – жирное масло. В сосудистопроводящих пучках наиболее интересно строение сосудов; ситовидные трубки в сухих объектах плохо различимы и диагностического значения не имеют (см. рис. 7). Механические элементы, как и в коре, бывают в виде волокон и каменистых клеток.

Сосуды и механические ткани препарата рассматривают в растворе хлоралгидрата.

Цельные корни и корневища, обычно не требуют анатомического исследования для определения подлинности. В сомнительных случаях с них делают поперечный и продольный срезы после предварительного замачивания в разбавленном глицерине в течение 1–3 суток. Обработка срезов такая же, как и для коры.

Микрохимические реакции

Микрохимические реакции проводят обычно одновременно с микроскопическим анализом лекарственного растительного сырья, наблюдая их результаты под микроскопом.

На клетчатку:

Хлор-цинк-йод окрашивает клетчатку в сине-фиолетовый цвет, а пробку и одревесневшие элементы – в желтый или бурый цвет (25 г хлористого цинка, 6,5 г йодистого калия, 1,3 г металлического йода, 10,5 мл воды). Реактив необходимо сохранять в склянке из темного стекла.

Йод с серной кислотой окрашивает клетчатку в синий цвет. Сначала препарат помещают в раствор йода (0,3 г металлического йода, 1,3 г йодистого калия, 100 мл воды), затем перекладывают в каплю серной кислоты (2 части серной кислоты, 1 часть воды).

Реактив Швейцера растворяет клетчатку оболочки, кутикула же остается нерастворенной. Реактив приготовляют путем обливания медных стружек 25-процентным раствором аммиака и последующим частым помешиванием при доступе воздуха или же растворением свежеосажденной окиси меди в 25-процентном растворе аммиака; хранится в темном месте, в хорошо закупоренной склянке. Концентрация реактива имеет решающее значение для результата исследования тех или иных объектов.

11

На одревеснение:

Флороглюцин с соляной кислотой окрашивает одревесневшие оболочки клеток в малиново-красный цвет. Окраска нестойкая, исчезает особенно от воды и при нагревании. Реакцию производят на предметном стекле: срезы смачивают 1-процентном спиртовым раствором флороглюцина и прибавляют каплю дымящей соляной кислоты. Одревесневшие элементы сразу же краснеют, что видно даже простым глазом. Окрашенный препарат переносят на другое стекло в глицерин для быстрого удаления кислоты и затем в каплю хлоралгидрата. Порошок смачивают в капле флороглюцина на предметном стекле, снимают фильтровальной бумагой излишнюю жидкость, прибавляют каплю соляной кислоты; после покраснения убирают кислоту фильтровальной бумагой и к препарату прибавляют каплю раствора хлоралгидрата.

Сернокислый анилин в водном или спиртовом растворе окрашивает одревесневшие клеточные оболочки в ярко-желтый цвет (1 г сернокислого анилина растворяют в 100 мл воды и прибавляют 5 капель серной кислоты).

Паранитроанилин (1-процентный водный раствор) быстро окрашивает одревесневшие ткани в оранжевый цвет.

Сафранин (1-процентный раствор сафранина в 50-градусном спирте). Срезы оставляют в краске около 1 часа, затем промывают водой, переносят в 96-градусный спирт для отмывания излишней краски и быстро осторожно промывают кислым спиртом (1–2 капли крепкой соляной кислоты на 100 мл 96-градусного спирта), который извлекает краску из всех тканей, кроме одревесневших; препарат заключают в глицерин.

На опробковение:

1.Хлор-цинк-йод окрашивает опробковевшие клеточные оболочки в желтый пли бурый цвет.

2.Судан-III окрашивает опробковевшие оболочки в красноватооранжевый цвет.

На кутинизанию. Кутикула, как и пробка, окрашивается многими красящими веществами, но положиться на какую-нибудь одну окраску нельзя. Часто применяют красители жировых веществ – cудан-III, альканин, цианин и др. Кутин нерастворим в аммиачной окиси меди, в концентрированных и разбавленных минеральных кислотах; растворяется при нагревании в концентрированном едком кали.

На пектиновые вещества:

Рутениевый красный окрашивает пектиновые вещества в красномалиновый цвет. Употребляется водный раствор 1 : 5000 до 1 : 10000; довольно стоек при защите от света.

Метиленовая синька окрашивает пектиновые вещества в синий цвет. Применяют слабые водный или спиртовый растворы.

Сафранин окрашивает пектиновые вещества в оранжево-желтый цвет. Обычно применяют 0,5–1-процентные водные растворы.

12

Пектиновые вещества нерастворимы в аммиачной окиси меди; растворяются при воздействии горячей 5-процентной соляной кислоты с последующим воздействием горячего 5-процентного аммиака.

На крахмал:

Раствор Люголя дает с крахмалом сине-фиолетовое окрашивание (0,5 г йода, 1 г йодистого калия, 100 мл воды). Перед употреблением разбавляется водой до слабо-желтого окрашивания.

Хлорал-йод дает с крахмалом синее окрашивание. Реактив приготовляется прибавлением к обычному раствору хлоралгидрата кристаллического йода в избытке, чтобы часть его оставалась нерастворенной. Реактив удобен для открытия небольших количеств крахмала в порошках, одновременно достигается окрашивание крахмала и просветление препарата, приэтомзернакрахмаларасплываютсямедленнее, чемвчистомхлоралгидрате.

Фенол-йод в смеси с хлорал-йодом окрашивает крахмал сначала в красно-фиолетовый, переходящий затем в черный цвет. Преимущество фенол-йода заключается в том, что он обнаруживает минимальные количества крахмальных зерен, не изменяя их.

Форму и строение крахмальных зерен обычно наблюдают в воде или в сильно разбавленном глицерине.

На сахара:

1.Реакция Троммера дает возможность определять в клетках наличие моноили дисахаров. Не слишком тонкие срезы, содержащие, по крайней мере, два слоя неповрежденных клеток, помещают на 1–2 минуты в концентрированный раствор медного купороса. Продолжительность выдерживания срезов в медном купоросе зависит от толщины среза и от свойств исследуемой ткани. Затем срезы быстро ополаскивают водой, чтобы смыть сверху медный купорос, и переносят на заранее подготовленное предметное стекло в каплю концентрированного раствора едкого калия, подогревая до кипения. Клетки, содержащие декстрозу, очень скоро обнаруживают наличие оранжевых или красно-желтых мелкозернистых осадков редуцированной закиси меди. Клетки, содержащие тростниковый сахар, вначале показывают лишь синеватую или фиолетовую окраску. Но если кипятить их дольше и таким образом перевести сахарозу в инвертный сахар, то появится оранжевый осадок закиси меди, поэтому реакцию следует производить самым тщательным образом.

2.Фелингова жидкость также применяется для обнаружения в клетках сахаров. Фелингову жидкость приготовляют из трех растворов: 7 г медного купороса и 100 мл воды, 35 г сегнетовой соли и 100 мл воды, 12 г едкого натра и 100 мл воды. Растворы хранят отдельно и смешивают поровну перед употреблением. Объект помещают в каплю смеси и подогревают до кипения. Получается красное или фиолетовое окрашивание, в зависимости от наличия того или иного сахара. Реакция с Фелинговой жидкостью имеет много недостатков. К числу их в первую

13

очередь относится то, что образующийся осадок закиси меди не локализуется в клетках, содержавших сахар, а в виде суспензии разносится по всему препарату, особенно при неумеренном нагревании.

На инулин. В клетках сухих объектов инулин находится в виде бесформенных комков; легко растворим в воде и щелочах при нагревании: осаждается из растворов спиртом. Открывают его в клетках при помощи реакции Молиша. Срез помещают на предметное стекло в каплю 20процентного спиртового раствора L-нафтола и прибавляют 1– 2 капли концентрированной серной кислоты; появляется розово-фиолетовое окрашивание. При замене L-нафтола тимолом получается красное окрашивание. Эти же реакции дают и другие углеводы, например, крахмал, но его отсутствие устанавливают по отрицательной реакции с йодом.

На жирные и эфирные масла:

1.Судан-III окрашивает капли жирного и эфирного масла в оранжевый или желто-красный цвет. Так же, но несколько медленнее окрашивается смола, кутикула, пробка и млечники. (Реактив состоит из 0,01 г анилиновой краски судан-III, 5 г спирта и 5 г глицерина.) Срезы помещают на несколько часов в реактив, затем промывают в 50-процентном спирте и заключают в глицерин.

Омыление по Розенталеру. Срезы помещают в 15-процентный раствор едкой щелочи и слегка подогревают. Через некоторое время выделяются кристаллыжирнокислых солейввидеотдельныхиглилипучков.

Обезжиривание производят повторным извлечением или же продолжительным настаиванием срезов или порошка в закрытых пробирках с бензином, ксилолом или эфиром.

На смолистые вещества. Состав смолистых веществ меняется в зависимости от вида растения, от стадии вегетации и проч., поэтому и определенной реакции на смолу не имеется. Из наиболее применяемых для обнаружения смолы являются следующие реактивы:

1.Насыщенный раствор уксусно-кислой меди окрашивает смолы

визумрудно-зеленый цвет. Объект сначала помешают в раствор на продолжительное время, от нескольких дней до месяца и больше, после чего его тщательно промывают водой и приготовляют срезы. Характерное окрашивание в определенных местах срезов может свидетельствовать о наличии смол. Все же для большей надежности реакции требуется дальнейшая проверка, так как жирные кислоты могут образовать при действии ацетата меди соли с таким же окрашиванием.

2.Спиртовый раствор судана-III окрашивает смолы, как и жирные и эфирные масла, в желто-красный цвет различных оттенков. Следовательно, для смол эта реакция не является специфичной, но с дополнительным применением способов растворения смол все же можно для ориентировки ею пользоваться. Так, смола не растворяется в соляной кислоте, что является ценным при ее определении; растворяется в спирте,

14

бензине, петролейном эфире, хлоралгидрате, хлороформе, в серной кислоте и т. д. Жирные масла в серной кислоте и спирте полностью не растворяются.

3.Реакция по Цалевскому. Для выявления смол срезы помещают на предметное стекло в каплю насыщенного водяного раствора щавелевокислой мели и подогревают до 100° С на водяной бане. Расплавляющаяся смолапринимаетприэтомзеленыйцвет, хорошосохраняющийсявглицерине.

На слизь:

1.Спиртовый раствор метиленовой сини (1 : 5000) окрашивает слизь

вголубой цвет. В воде слизь разбухает и растворяется, в спирт-глицерине она представляется в виде стекловидной массы; в хлоралгидрате слизь постепенно становится слоистой; в спирте слизистые клетки желтеют и обнаруживают слоистость. Слизи сильно преломляют свет.

2.Реакция с тушью. Смесь туши и воды приготавливают по мере надобности. Объект, измельченный в порошок, размешивают в капле смеси. В темно-сером поле зрения, между частичками порошка, выделяются белыми островками стекловидные бесструктурные комки слизи, которые постепенно разбухают и растекаются благодаря растворимости слизи в воде.

На дубильные вещества:

1.Водный 2–5-процентный раствор хлорного железa окрашивает дубильные вещества в темно-зеленый или синевато-черный цвет. Срезы помещают в раствор хлорного железа, а затем переносят в глицерин.

2.Водный 1-процентный раствор железных квасцов окрашивает дубильные вещества в сине-черный или зелено-черный цвет.

3.Реакция Дюфруа. На препарат действуют небольшим количеством соляной кислоты, а затем 1-процентной осмиевой кислотой; при наличии дубильных веществ получается синее окрашивание или синий осадок.

4.Реакция Гардинера. Применяют концентрированный раствор молибденовокислого аммония в концентрированном растворе хлористого аммония. При действии этого реактива в клетках, содержащих дубильные вещества, выпадает желтый осадок.

На алейрон и другие белковые вещества. Для обнаружения алейроновых зерен, как и других белковых компонентов клетки, чаще всего используются следующие реактивы:

1. Раствор йода в йодистом калии окрашивает алейроновые зерна

идругие белковые вещества в желтый или бурый цвет.

2.Реактив Милона (азотнокислая закись-окись ртути) окрашивает белковые вещества, содержащие тирозин, в кирпично-красный цвет. (Ртуть растворяют в азотной кислоте в равных весовых пастях и разводят равным объемом воды.)

3.Ксантопротеиновая реакция. Объект нагревают в 10-процентной азотной кислоте, белковые вещества желтеют, затем избыток жидкости убирают с помощью фильтровальной бумаги и прибавляют аммиак,

15

получается оранжевое окрашивание белков.

4. Биуретовая реакция. Объект помещают и насыщенный раствор медного купороса, затем промывают и обрабатывают 50-процентным раствором едкого калия и слегка подогревают; белковые вещества окрашиваются в сине-фиолетовый цвет.

На оксалат кальция. Наличие оксалата кальция легко обнаруживается в клетках в виде его образований – кристаллов, друз, рафид и песка. В препаратах с обильным клеточным содержимым они видны после просветления препарата в едком калии или в хлоралгидрате. Эти кристаллические включения нерастворимы в воде, глицерине, спирте и щелочах. В соляной кислоте они растворяются без выделения газа и образования осадка. В серной кислоте они растворяются, но на их месте образуются кристаллы гипса. В уксусной кислоте они нерастворимы. В поляризованном свете кристаллы сильно блестят, особенно эффективно при малом увеличении микроскопа. В сомнительных случаях, если не удается увидеть кристаллы (например, в мелких порошках или кристаллическом песке), их присутствие доказывают превращением оксалата кальция в гипс. Для этого порошок на предметном стекле размешивают в капле 50-процентной серной кислоты, накрывают покровным стеклом и слегка нагревают; через 2–3 минуты появляются игольчатые кристаллы гипса, часто собранные пучками или звездочками.

На алкалоиды. Встречающиеся в растениях алкалоиды весьма разнообразны по своей природе и распределяются на отдельные группы, для определения которых применяются те или иные реакции.

Общие реакции на алкалоиды обычно бывают двух видов: реакции осаждения и реакции окрашивания. К числу осаждающих реактивов, наиболее применяемых в микроскопической практике, относятся:

1)Йод-йодистый калий (1 г йода, 2 г йодистого калия, 100 мл воды), иногда подкисленный серной кислотой.

2)Бром-бромистый калий (20 г бромистого калия, 100 мл воды, брома до появления осадка).

3)Реактив Драгендорфа (8 г основного азотнокислого висмута растворяют в 20 г азотной кислоты и раствор вливают в концентрированный раствор из 27,1 г йодистого калия. Через несколько дней отфильтровывают от выделения азотнокислого калия и фильтрат разбавляют водой до 100 мл).

4)Реактив Майера (1,358 г сулемы растворяют в 60 мл воды, приливают раствор5 гйодидакалияв10 млводы, азатемразбавляютводойдо100 мл).

5)Фосфорно-молибденовая и фосфорно-вольфрамовая кислоты применяются в 1–3-процентных растворах.

К числу реактивов, окрашивающих алкалоиды, относятся:

1)Концентрированная серная кислота.

2)Реактив Эрдмана (концентрированная серная кислота, содержащая азотную кислоту).

16

3)Реактив Марки (концентрированная серная кислота, содержащая формальдегид).

4)Парадиметиламинобензальдегид с серной кислотой и мн. др. Ввиду того, что общие реактивы на алкалоиды реагируют также с

белковыми веществами и частично с глюкозидами и углеводами, необходимо, во избежание ошибок, производить контрольные реакции после устранения алкалоидов.

На гликозиды. Встречающиеся в растениях гликозиды представляют разнообразнейшие группы соединений и определяются методами: гидролиза, цветных реакций, реакций осаждения и биологических реакций. Выявление гликозидов непосредственно в клетках растения сопряжено с большими трудностями, которые значительно облегчаются при наличии хорошо разработаннойметодикихимическогоопределениясоединенийданнойгруппы.

На глюкозиды сердечного действия существуют различные реакции:

1)Реакция с пикратом натрия(1-процентный раствор пикриновойкислоты смешивают с 10-процентным раствором едкого натра в coотношении 9 : 1, смесь готовят на один день работы).

2)Реакция Легаля (10-процентный водный раствор нитропруссида натрия + 30-процентный раствор щелочи).

3)Реакция Либермана (на гликозид действуют уксусным ангидридом

сприбавлением концентрированной серной кислоты).

4)Реакция Келлер – Килиани. Готовят два раствора: а) 99 частей кон-центрированной уксусной кислоты + 1 часть 5-процентного раствора

хлорного железа; б) 99 частей концентрированной сеpной кислоты + 1 часть 5-процентного раствора хлорного железа. На гликозид действуют сначала первым раствором, затем вторым.

17

ЛЕКАРСТВЕННЫЕ СБОРЫ, БРИКЕТЫ И ЧАИ

Лекарственные сборы и чаи представляют собой равномерные смеси различных видов резаного или цельного растительного лекарственного сырья, объединенных единойтерапевтической направленностьюфизиологического действия. Иногда к сборам добавляют другие вещества типа минеральных солей, эфирных масел и пр.

Всостав чаев не должны входить сильнодействующие ингредиенты, так как чаи предназначены для внутреннего употребления и дозировка их неточна. По терапевтическому действию различают чаи: аппетитные, ветрогонные, желудочные, грудные, витаминные, желчегонные, потогонные, слабительные, противогеморройные, успокоительные и др.

Чаи применяются преимущественно для внутреннего употребления, а сборы – для полоскания горла, примочек, припарок, лечебных ванн и проч.

Приготовление. Лекарственное сырье, входящее в состав сборов и чаев, подвергается измельчению по отдельности. Листья, травы и коры режут; кожистые листья (толокнянка, брусника и т. п.) осторожно толкут, превращая их в крупный порошок; корни и корневища в зависимости от формы, величины и твердости режут или дробят; плоды и семена пропускают через вальцы или мельницы; некоторые семена и ягоды используют цельными; цветки (бузина) и мелкие цветочные корзинки (ромашка, тысячелистник) используют также цельными; цветки липы измельчают до 0,5–20 мм.

Степень измельчения растительного сырья зависит от назначения сбора (чая). Сырье, входящее в состав сборов, используемых для приготовления настоев или отваров для внутреннего применения или для полоскания горла, измельчают следующим образом: листья, цветки и травы – до частиц размером не более 5 мм (листья толокнянки и другие кожистые листья – не более 1 мм); стебли, коры, корни и корневища – не более 3 мм; плоды и семена – не более 0,5 мм. Сырье, входящее в состав сборов для ванн и в состав мягчительных сборов для припарок, просеивают сквозь сито с диаметром отверстий 2 мм. При всех степенях измельчения растительную пыль отсеивают сквозь сито с размером отверстий 0,2 мм.

Соответственно измельченное сырье тщательно перемешивают для получения равномерной смеси. Если в сбор нужно добавить минеральную соль, то из нее готовят насыщенный раствор и растительный материал опрыскивают из пульверизатора при перемешивании; затем сбор высушивают при температуре не выше 60° С. Приготовленную равномерную растительную массу расфасовывают в соответствующую тару.

Анализ. При анализе сборов (чаев) в контрольно-аналитических лабораториях определяют подлинность и чистоту. При этом применим толькометодфармакогностического анализаприпомощилупыимикроскопа.

Впротоколеанализаотмечаютсоставсбора(чая), внешниепризнаки, свойства, некоторые числовые показатели (влажность, зольность, процент содержания

18