2134
.pdfМинистерство образования и науки Российской Федерации Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования
«Нижегородский государственный архитектурно-строительный университет»
В.Б. Темнухин
БИОХИМИЯ, БИОФИЗИКА И ФИЗИКО-ХИМИЧЕСКИЕ
ОСНОВЫ ЖИЗНЕДЕЯТЕЛЬНОСТИ
Учебно-методическое пособие по подготовке к лабораторным занятиям
для обучающихся по направлению подготовки 05.03.06 Экология и природопользование
профиль Природопользование
Нижний Новгород
2016
2
Министерство образования и науки Российской Федерации Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования
«Нижегородский государственный архитектурно-строительный университет»
В.Б. Темнухин
БИОХИМИЯ, БИОФИЗИКА И ФИЗИКО-ХИМИЧЕСКИЕ
ОСНОВЫ ЖИЗНЕДЕЯТЕЛЬНОСТИ
Учебно-методическое пособие по подготовке к лабораторным занятиям
для обучающихся по направлению подготовки 05.03.06 Экология и природопользование
профиль Природопользование
Нижний Новгород
2016
3
УДК
В.Б. Темнухин / Биохимия, биофизика и физико-химические основы жизнедеятельности [Электронный ресурс]: учеб.-метод. пос. / В.Б. Темнухин; Нижегор. гос. архитектур. -
строит. ун-т – Н. Новгород: ННГАСУ, 2016. – __ с.– 1 электрон. опт. диск (CD-RW).
В настоящем учебно-методическом пособии по дисциплине «Биохимия, биофизика и физико-химические основы жизнедеятельности» даются рекомендации обучащимся для выполнения лабораторных работ.
© |
В.Б. Темнухин, 2016 |
© |
ННГАСУ, 2016 |
|
4 |
Содержание |
|
Техника безопасности………………………………………………………………………… |
………4 |
Химия белков………………………………………………………………………………….....……5 |
|
Лабораторная работа №1 . Качественные реакции на белки. Изучение явлений денатурации и ренатурации белка……………………………………..……………………………...5
Лабораторная работа №2. Качественные и количественные реакции на аминокислоты.
Изучение явления диализа……………………………………………………………………………..6
Лабораторная работа № 3. Определение изоэлектрической точки полипептидной молекулы………………………………………………………………………………………………..8
Химия углеводов……………………………………………………………………………………..10
Лабораторная работа №4. Свойства моно- и дисахаридов. Качественные реакции на моно- и дисахариды………………………………………………………………………………..10
Лабораторная работа № 5. Качественные реакции на полисахариды и декстрины…………...12
Химия липидов……………………………………………………………………………………….13
Лабораторная работа № 6. Качественные реакции на липиды…………………………………..13
Основы биофизики…………………………………………………………………………………...17
Лабораторная работа №7. Регистрация биоэлектрических реакций растительного организма… … … … … … … … … … … … … … … … … … … … … … … … . … … 1 7
Лабораторная работа № 8. Изучение процессов транспорта через мембрану…………….…….18
Список литературы……………………………………………………………………….……….…19
5
Техника безопасности
1.Все работы проводить с разрешения преподавателя.
2.При работе нельзя засасывать жидкие реактивы в пипетку ртом.
3.Работы, связанные с выделением вредных газообразных веществ, а также с использованием концентрированных щелочей и кислот необходимо проводить под тягой.
4.При разливе кислоты необходимо присыпать место разлива песком, а затем нейтрализовать раствором соды.
5.При разливе щелочи необходимо место разлива промыть большим количеством воды, а затем нейтрализовать раствором уксусной кислоты.
6.При попадании кислоты на руки необходимо промыть руки большим количеством воды, а затем нейтрализовать пораженный участок кожи раствором соды.
7.При попадании на руки щелочи необходимо промыть руку большим количеством воды, а затем нейтрализовать уксусной кислотой.
8.При аварийной ситуации связанной с битьем посуды необходимо убрать осколки стекла, а место пролива необходимо нейтрализовать раствором соды или уксусной кислоты.
9. При ожоге необходимо дезинфицировать обожженное место раствором перманганата калия, а затем обработать обожженное место жирным кремом.
10.Приборы, задействованные в эксперименте, должны быть заземлены.
6
Химия белков
Лабораторная работа №1
Качественные реакции на белки. Изучение явлений денатурации и ренатураци белка
Пояснения. При качественном обнаружении белков используются биуретовая и ксантопротеиновая реакции.
Биуретовая реакция - это реакция на пептидные связи. В присутствии CuSO4 в щелочной среде атомы азота пептидной связи образуют окрашенный в пурпурный цвет комплекс с ионами меди.
Ксантопротеиновая реакция - это реакция на циклические аминокислоты фенилаланин и тирозин. Эти аминокислоты содержат в боковом радикале бензольные кольца.
Реактивом на ароматические аминокислоты является концентрированная азотная кислота. В процессе нагревания раствора белка с кислотой наблюдается желто-оранжевое окрашивание, которое обусловлено нитрованием бензольных колец, входящих в состав циклических аминокислот белка.
Денатурацией называется процесс утраты белком своей третичной структуры. При этом молекула белка теряет способность выполнения биологических функций. Если денатурация неглубока, то белок при определенных физико-химических условиях может восстановить свою нативную структуру. Этот процесс называется ренатурацией. Таким образом, денатурация может быть обратимой и необратимой.
Денатурацию могут вызвать следующие факторы: нагревание, излучения, сильные кислоты или щелочи, тяжелые металлы, органические растворители и детергенты.
Цель работы - ознакомиться с качественными реакциями на белки, а также факторами вызывающими их денатурацию и ренатурацию.
Материалы и оборудование: пипетки, пробирки, стеклянные колбы, химические стаканы, 5% раствор КОН, 1% раствор CuSO4 концентрированная азотная кислота, 40% раствор NaCl, яичный альбумин, водяная баня.
Ход работы. Осторожно проделать в скорлупе куриного яйца отверстия с двух сторон. Вылить белок в стакан вместимостью 0,5 литра и добавить кнему 250 мл дистиллированной воды. Затем, содержимое перенести в мерный цилиндр и довести до 300 мл дистиллированной водой, после чего оставить раствор на 30 минут для образования хлопьевидного осадка глобулинов. Полученную суспензию фильтруют через складчатый фильтр и используют для выполнения качественных реакций на белки.
Впервую пробирку к 2 мл раствора белка добавить равный объем 5% раствора КОН и
перемешать. После чего к содержимому пробирки добавить 2 капли 1% раствора CuSO4 и перемешать еще раз. Наблюдать развивающуюся пурпурную окраску (биуретовая реакция).
Во вторую пробирку к 2 мл раствора белка добавить несколько капель концентрированной азотной кислоты. Происходит процесс денатурации белка. Затем эту пробирку поставить на водяную баню и нагревать в течение 1-2 минут. При этом наблюдается оранжево-желтое окрашивание.
Втретью пробирку к 2 мл раствора белка добавляем 2 мл 40% раствора NaCl. Наблюдаем денатурацию белка. Однако после добавления в эту же пробирку 12 мл дистиллированной воды происходит ренатурация белка (раствор в пробирке становится светлым).
7
Лабораторная работа № 2
Качественные и количественные реакции на аминокислоты. Изучение явления диализа
Пояснения. Наиболее распространенной в аналитической практике реакцией на серу, содержащуюся в белках, является реакция Фоля. Реакция обусловлена присутствием в белке таких аминокислот как цистеин и метионин. Реакция протекает в несколько стадий.
При нагревании в присутствии едкой щелочи (NaOH) цистеиновые остатки разрушаются с образованием сульфида натрия. Затем при реакции плюмбита натрия с сульфидами образуется осадок сульфида свинца, окрашенный в черный цвет.
Рисунок 1. Схема протекания реакции Фоля
1) CH2-SH |
СН2ОН |
|
||||
|
|
|
|
|
|
|
CH-NH2 + 2NaOH |
CH2 |
|
NH2 + Na2S + H20 |
|||
|
||||||
|
|
|
|
|
|
Сульфид |
СООН |
СООН |
натрия |
||||
Цистеин |
|
Серин |
|
|||
2) (CH3COO)2Pb + 2NaOH |
Pb(ONa)2 + 2CH3COOH |
|||||
Ацетат свинца |
|
Плюмбит |
||||
|
|
|
|
натрия |
||
3) Na2S + Pb(ONa)2 + 2H2О |
PbS + 4NaOH |
|||||
Сульфид |
|
|
|
Сульфид |
||
натрия |
|
|
|
свинца |
Однако не все пептидные соединения дают такую окраску. Например, желатин, который не содержит серосодержащих аминокислот, такой окраски не дает.
Для количественного определения аминокислот в аналитической практике используется реакция с нингидрином, которая протекает в 2 стадии.
Рисунок 2. Схема протекания реакции с нингидрином
1) R |
|
O |
R |
|
O |
|
|
OH |
|
|
OH |
CH |
NH2 + |
C H + CO2 |
+NH3 + |
||
|
|
OH |
|
|
OH |
COOH |
O |
O |
|
O |
|
|
|
Окисл. |
|
|
Вос. нингидрин |
|
|
нингидрин |
|
|
|
2) |
О |
|
О |
О |
О |
|
|
ОН |
НО |
|
|
|
|
+ NH3 + |
|
|
N |
|
|
ОН |
НО |
|
|
|
О |
|
О |
О |
О |
Диализ - процесс разделения высоко- и низкомолекулярных компонентов смеси на полупрнцаемой мембране. Высокомолекулярные соединения не могут проникать через мембрану, в то время как низкомолекулярные ионы способны ее преодолевать. Диализ можно ускорить, увеличивая температуру смеси, применяя проток воды, а также электрический ток.
8
Рисунок 3. Схема проведения диализа белково-солевой смеси
Белково-солевая смесь
Дистиллированная смесь
Полупроницаемая
мембрана
Цель работы - познакомиться с качественной реакцией на аминокислоты, содержащие серу, а также с реакцией количественного определения аминокислот с помощью нингидрина, изучить явление диализа и определения вязкости нативного и денатурированного белка.
Материалы и оборудование: яичный альбумин, раствор ацетата свинца, раствор сульфата аммония, раствор хлорида бария, реактив Несслера, пробирки, целлофановая пленка, вискозиметр Оствальда, 1% раствор нинигидрина в ацетоне.
Ход работы. Реакцию на серосодержащие аминокислоты проводят с раствором яичного альбумина и с раствором желатины.
В первой пробирке смешиваем 2 мл раствора желатина, 2 мл 20% раствора КОН, 2 мл раствора ацетата свинца. Во второй пробирке смешиваем 2 мл раствора яичного альбумина, 2 мл 20% раствора КОН и 2 мл раствора ацетата свинца. Обе пробирки нагреваем на водяной бане и наблюдаем образование осадка.
Реакцию с нингидрином изучают путем смешения в пробирке 2 мл раствора белка с 2 мл 1% раствора нингидрина на ацетоне. Содержимое пробирки нагревают на водяной бане при 90о С. В результате должно образоваться соединение пурпурного цвета.
Для проведение реакции диализа в пробирку с раствором яичного альбумина прибавляют раствор (NH4)2SO4. Пробирку закрывают целофановой пленкой, зажимают в штативе в перевернутом виде и помещают в стакан с дистиллированной водой. Через 30 минут с содержимым пробирки и стакана проводят качественные реакции на белок (биуретовая реакция), на ионы NH4 (с реактивом Несслера) и на ионы SO4 (с ВаС12). Объяснить разницу в результатах проведенных реакций.
9
Лабораторная работа № 3
Определение изоэлектрической точки полипептидной молекулы
Пояснения. Конформация полипептидной молекулы зависит от рН среды. Важной характеристикой белка, влияющей на его конформацию является изоэлектрическая точка белка
(ИЭТ).
ИЭТ белка - это такое значение рН раствора, при котором количество ионизированных основных групп равно количеству ионизированных кислотных групп. В изоэлектрической точке молекула белка электронейтральна. При изменении рН в кислую сторону подавляется диссоциация кислотных групп (молекула становится электроположительной). При изменении рН в щелочную сторону подавляется диссоциация основных групп (молекула становится k электроотрицательной).
Рисунок 4. Диссоциация аминокислот при разных значениях рН
Н+
1. Кислая среда R-CH-COOH R-CH-COOH
NH2 |
NH3 |
|
- |
|
OH |
2. Щелочная среда R-CH-COOHR-CH-COO-
NH2 |
NH2 |
При избытке НСl или КОН молекула свертывается в более плотный клубок.
Действие любой из нейтральных солей приводит к подавлению диссоциации ионогенных групп макромолекулы белка. При большой концентрации нейтральных солей сказывается высаливание. Высаливание снижает вязкость белкового раствора. Таким образом в изоэлектрической точке белка наблюдается минимум вязкости и светопропускания белкового раствора.
Кривая зависимости светопропускания от рН имееют седлообразную форму.
Это можно объяснить следующим образом. В изоэлектрической точке белка макромолекулы теряют заряд и становятся электронейтральными. Нейтральные макромолекулы приобретают способность к ассоциации. Это приводит к увеличению размеров частиц. Увеличение размеров частиц ведет к снижению светопропускания.
Цель работы - определить изоэлектрическую точку молекулы желатина.
Матедоалы и оборудование: 1% раствор желатина, 0,1 н. раствор КОН, 0,1 н раствор НСl, рН-метр-340, фотоэлектрический колориметр ФЭК-2, пипетки, мерные колбы.
Ход работы. В 1 литре дистиллированной воды растворяем 1 грамм кристаллического желатина. Приготовленный раствор фильтруем в горячем виде через складчатый фильтр. Затем раствор охлаждаем. Берем 5 мерных колб объемом по 50 мл. В первую колбу ничего не добавляем. Во вторую -добавляем 0,25 мл 0,1 н КОН, в третью - 0,5 мл 0,1 н КОН, в четвертую - 0,25 мл 0,1 н НС1, в пятую - 0,5 мл 0,1 н НС1.
Растворы в мерных колбах доводят до метки водой и перемешивают. Затем измеряют величину рН каждого раствора на рН-метре и светопропускание на фотоэлектроколориметре. Результаты измерений заносят в таблицу, изоэлектрической точке соответствует такое значение рН раствора, при котором значение светопропускания минимально. Строят также график зависимости светопропускания от рН.
10
Таблица 1 Величины рН и процент светопропускания в зависимости от состава исследуемого
раствора
Состав раствора |
Значения рН |
% светопропускания |
|
|
|
|
|
|
Химия углеводов
Лабораторная работа №4
Свойства моно- и дисахаридов. Качественные реакции на моно- и дисахариды
Пояснения. Углеводы являются соединениями, обладающими спиртовой группировкой, а также карбонильной группой (альдегидной или кетонной). Все углеводы разделяют на три основные группы: моно -, олиго-, и полисахариды.
Среди моносахаридов различают альдозы и кетозы. Моносахариды можно рассматривать как производные многоатомных спиртов, содержащих карбонильную группу. Простейшими представителями моносахаридов являются триозы: глицеральдегид и дигидрооксиацетон (рис.5).
По количеству углеродных атомов в цепи, углеводы делят на триозы (три атома), тетрозы (четыре), пентозы (пять), гексозы (шесть), седогептулезы (семь). Атомы углерода в цепи нумеруют начиная с альдегидной или кетонной группировки.
Рисунок 5. Строение альдоз и кетоз |
|
|
||
|
СН2ОН |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
СНОН |
Глицерин |
||
|
СН2ОН |
|
|
|
H-C=O |
CH2OH |
|||
|
|
|
|
|
CHOH |
C=O |
|||
|
|
|
|
|
CH2OH |
CH2OH |
|||
Глицеральдегид (альдоза) |
Дигидрооксиацетон (кетоза) |
Все моносахариды обладают стереоизомерией и могут принадлежать к D и L-рядам. Природные сахара являются D-изомерами.