tsgl2AIyUC

26. Результатом какого процесса размножения гидроидных является медуза:

27.Эпителиально-мускульные клетки у гидры располагаются:

А. Только в эктодерме Б. И в эктодерме, и в энтодерме В. Только в энтодерме Г. В мезоглее

28.Сцифистома – это:

А. Ротовое отверстие у некоторых медуз Б. Бесполое поколение у сцифоидных медуз В. Оболочка тела у некоторых полипов Г. Личинка коралловых полипов

29. Медузоидное поколение отсутствует:

30. Какой тип пищеварения характерен для гидры:

А. Только внутриклеточное Б. Полостное и внутриклеточное В. Только полостное Г. Пристеночное

40

Ключи к тестовым заданиям:

PROTOZOA

1 – Г; 2 – А; 3 – В; 4 – А; 5 – В; 6 – А; 7 – Г; 8 – В; 9 – Б; 10 – А; 11 – А; 12 – Г; 13 – Г; 14 – Г; 15 – А; 16 – Г; 17 – А; 18 – В; 19 – В; 20 – А; 21 – Б; 22 – А; 23 – Б; 24 – В; 25 – Б; 26 – В; 27 – Б; 28 – Б.

PORIFERA, CNIDARIA

1 – Б; 2 – В; 3 – Б; 4 – А; 5 – Г; 6 – А; 7 – В; 8 – Г; 9 – В; 10 – А; 11 – Б; 12 – Г; 13 – А; 14 – В; 15 – А; 16 – Б; 17 – В; 18 – А; 19 – А; 20 – Г; 21 – Г; 22 – В; 23 – Б; 24 – В; 25 – В; 26 – Б; 27 – Б; 28 – Б; 29 – Г; 30 – Б.

41

ИСПОЛЬЗОВАННАЯ И РЕКОМЕНДУЕМАЯ ЛИТЕРАТУРА

1.Барнс, Р. Беспозвоночные: новый обобщенный подход / Р. Барнс, П. Кейлоу, П. Олив, Д. Голдинг. – М.: Мир, 1992. – 583 с.

2.Грин, Н. Биология: В 3 т. / Н. Грин, У. Стаут, Д. Тейлор; пер. с англ. под ред. Р. Сопера. – 3-е изд. – М.: Мир, 2004. – Т. 1 – 454 с.; Т. 2 – 436 с.; Т. 3 – 451 с.

3.Догель, В. А. Зоология беспозвоночных / В. А. Догель. – М., 1973. –

606 с.

4.Иванов, А. В., Полянский Ю. И., Стрелков А. А. Большой практикум по зоологии беспозвоночных. Простейшие, губки, кишечнополостные, гребневики, плоские черви, немертины, круглые черви: Учебное пособие для биолог. спец. ун-тов. / А. В. Иванов, Ю. И. Полянский, А. А. Стрелков. – М.: Высш. школа, 1981. – 504 с.

5.Лобзин, Ю. В. Инфекционные болезни: Учебное пособие к практическим занятиям по инфекционным болезням / под ред. Ю. В. Лобзина. – СПб.: Военно-медицинская академия, 2000. – 226 с.

6.Натали, В. Ф. Зоология беспозвоночных / В.Ф. Натали. – М.: Просве-

щение, 1975. – 495 с.

7.Наумов, А.Д. Зоологические экскурсии на Белом море: Пособие для летней учебной практики по зоологии беспозвоночных / А. Д. Наумов, А. В. Оленев / Под ред. А. А. Стрелкова. – Л.: Изд-во Ленингр. ун-та,

1981. – 176 с.

8.Санитарно-микробиологический и санитарно-паразитологичекий анализ воды поверхностных водных объектов: Методические указания МУК 4.2.1884-04, 2004.

9.Пименова, И. Н. Зоология беспозвоночных. Теория. Задания. Ответы / И. Н. Пименова, А. В. Пименов. – Саратов: Лицей, 2005. – 288 с.

10.Практикум по зоологии беспозвоночных: Учебное пособие для студ. пед. вузов, обуч. по спец. «Биология» / В. А. Шапкин, З. И. Тюмасева, И. В. Машкова, Е. В. Гуськова. – М.: Академия, 2003. – 208 с.

11.Шалапёнок, Е. С. Краткий определитель беспозвоночных животных: учеб. пособие для студ. биол. фак. спец. 1-31 01 01 «Биология»,

13.Яхонтов, А. А. Зоология для учителя: В 2 т. – М.: Высшая школа,

1968.

42

Электронные образовательные ресурсы (ЭОР)

1.Биологический энциклопедический словарь [Электронный ресурс]: [около 7 600 статей]. – Электрон. дан. – М.: ДиректМедиа Паблишинг, 2006. – 1 электрон. опт. диск (CD-ROM): цв. – (Электронная библиотека ДМ) (Классика энциклопедий). – Систем. требования: IBM PC 486 и

выше; 16 Мб ОЗУ; Windows 95/98/ME/NT/XP/2000; CD-ROM; SVGA. –

Загл. с контейнера. – ISBN 5-94865-124-Х: 324-00; 500-00.

2.Харламова М. Н. Животный мир Мурманской области [Электронный ресурс]: учеб. пособие для обучающихся 7 классов общеобразоват. учреждений Мурман. обл. / М. Н. Харламова, Е. Н. Луппова, Е. Г. Митина; Ком. по образованию Мурман. обл., Мурм. обл. ин-т повышения квалификации работников образования. – Электрон. дан. – Мурманск: [б. и.], 2006. – 1 электрон. опт. диск (CD-R). – Систем. требования: MSWindows95/98/2000/XP; SVGA видеоплата; CD-ROM; IE 4.0 и выше;

мышь. – Загл. с контейнера. – На тит. экране указано: Мультимедийное учеб. пособие. – 250-00.

3.http://invertebrates.ru. Большой практикум по зоологии беспозвоночных.

43

ПРИЛОЖЕНИЯ

Приложение 1

3.2.1. Принцип методик с использованием флотантов

Цисты патогенных простейших кишечника и яйца гельминтов обнаруживаются при микроскопическом исследовании осадка, получаемого после центрифугирования не менее 4-кратно разведенного раствора флотанта с плотностью 1,26, в который искомые паразитарные агенты попадают из осадка, смываемого с мембранных фильтров после фильтрации через них исследуемой воды. Осаждение цист простейших и яиц гельминтов происходит за счет резкого снижения плотности флотанта, которая после разведения достигает 1,03 и менее, что ниже плотности паразитарных агентов.

3.3. Флотационный метод исследования воды

Оборудование:

прибор для фильтрования типа ПВФ-142, ПМФ-70, УППВ; мембранные фильтры типа МФАС-СПА с размерами пор 1,5–3,0 мкм, МФАС-СПА-4 с размерами пор 2,4–4,5 мкм, прозрачные АТМ с размерами пор 1,0–3,05; префильтры – капроновая сетка с ячейками

60–70 мкм;

лотки, эмалированные кастрюли или ведра, акварельные кисточки, пинцеты.

Примечание. Допускается к использованию оборудование с аналогичными характеристиками, разрешенное к применению для этих целей в установленном порядке.

Химреактивы:

–33%-ный водный раствор семиводного сульфата цинка (ZnSO4 × 7H2O): 331 г ZnSO4 × 7H2О растворить в 1 л кипящей дистиллированной воды.

После охлаждения до комнатной температуры измерить удельную плотность ареометром, которая должна быть не менее 1,25–1,26;

или 30%-ный водный раствор сахарозы: 300 г сахарозы растворяют в

1л горячей дистиллированной воды;

–1%-ный раствор Люголя;

–6–8%-ный раствор формалина;

–дистиллированная вода.

Ход исследования.

Пробу воды фильтруют через мембранные фильтры типа МФАС-СПА или прозрачные аналитические трековые мембраны (АТМ) в соответствии с инструкцией.

44

Весь полученный смыв с мембранных фильтров или после концентрации химреактивами центрифугируют в пробирках емкостью 10 мл и более в течение 5 мин. при 1 500 об./мин.

Надосадочную жидкость осторожно сливают.

Добавляют 6–8 мл 2%-ного водного раствора формалина (или дистиллированной воды) и размешивают.

Суспензию вновь центрифугируют в течение 5 мин. при 1 500 об./мин. Надосадочную жидкость осторожно сливают или отсасывают пипет-

кой.

К осадку добавляют 3 мл одного из флотантов с удельным весом не менее 1,26 (33%-ный водный раствор семиводного сульфата цинка или 30%-ный водный раствор сахарозы и т.п.) и тщательно перемешивают стеклянной палочкой.

Центрифугируют в течение 5 мин. при 2 000 об./мин. или 10 мин. при

1 500 об./мин.

Надосадочную жидкость осторожно сливают или отсасывают пипеткой и переносят в центрифужную пробирку, разбавляя в 4 раза дистиллированной водой, и центрифугируют в течение 5 мин. при 1 500 об./мин.

Надосадочную жидкость осторожно сливают. Из осадка готовят препараты на предметных стеклах и микроскопируют под покровным стеклом при увеличении: объектив 10х–40х, окуляр 10х. Для исследования на цисты лямблий микропрепараты окрашивают раствором Люголя.

При микроскопии и идентификации паразитарные патогены в пробах воды необходимо дифференцировать от фитопланктона и гидробионтов.

45

Приложение 2

Последовательность приготовления тонкого мазка крови:

–обработка кожи IV пальца левой кисти 70%-ным спиртом;

–прокол кожи стерильным ланцетным пером;

–получение капли крови из ранки (место укола) путем сдавливания пальцами основной и средней фаланг IV пальца кисти больного;

–нанесение капли крови на конец обезжиренного стекла путем прикосновения им к кожной ранке;

–распределение капли крови по всему предметному стеклу (краем специального шлифованного стекла касаются капли и равномерным движением размазывают кровь по предметному стеклу от одного его конца к другому).

Толстую каплю крови получают на другом предметном стекле в двух местах, ближе к его концам. Для этого следует приложить палец с выступившей каплей крови к поверхности стекла и круговыми движениями распределить кровь на участке диаметром 10–15 мм.

В клинической лаборатории тонкие мазки красят спиртовым раствором краски Романовского-Гимзы, а толстые кали – водной краской Романовского (для гемолиза эритроцитов).

После подсыхания препаратов (тонкий мазок – через 20–30 мин., толстая капля – через сутки) производится микроскопирование мазков.

Для приготовления висячей капли на центр покровного стекла петлей или пипеткой наносят каплю крови.

Покровное стекло с помощью вазелина прикрепляют к предметному стеклу так, чтобы капля оказалась в центре лунки; предметное стекло переворачивают вверх лункой; каплю рассматривают в световом микроскопе при опущенном конденсоре и сухом или иммерсионном объективе.

46

Приложение 3

Методы фиксации морских беспозвоночных животных

Для сохранения собранного материала обычно пользуются такими широко распространенными фиксаторами, как 4%-ный формалин и 70%-ный этиловый спирт. Для получения 70%-ного спирта 70 мл ректификата доливают пресной водой так, чтобы общий объем раствора составил 96 мл. Готовый фиксатор нельзя закрывать резиновой пробкой.

Каждый из них в принципе универсален, однако во многих случаях можно указать приемы, дающие наилучшие результаты. Как правило, отобранные экземпляры животных помещают в сосуд с заранее приготовленной фиксирующей жидкостью. Поскольку формальдегид постепенно растворяет углекислую известь, организмы, обладающие известковыми скелетами, следует заключать в спирт. Но в качестве временного средства годится и формалин, нейтрализованный порошком мела. При консервации дночерпательных и планктонных проб их помещают в банку с морской водой, а затем добавляют 40%-ный раствор формальдегида с таким расчетом, чтобы его концентрация составляла 4%. Одна объемная часть формальдегида на 9 частей морской воды, куда входит и собственный объем материала.

Фиксатор полагается несколько раз заменять. Исключение составляют только пробы планктона. Отработанный раствор фильтруют и к трем его частям приливают одну часть свежего, после чего он может быть использован снова.

В тех случаях, когда необходимо сохранить только скелет или раковину, освобожденные от мягких тканей, животных вываривают в кипятке или подвергают мацерации (гниению). Крупных медуз с плоским зонтиком, таких как Aurelia aurita, можно высушить на листе фильтровальной бумаги. При этом получается изображение-отпечаток, который долго сохраняет прижизненную окраску животного.

Многие организмы под воздействием фиксатора сокращаются и принимают неестественную форму. Поэтому их приходится предварительно анестезировать, т. е. лишать возможности быстро реагировать на внешние раздражители. В большинстве случаев неплохие результаты дает применение английской соли (MgS04), сильно разбавленного спирта или пресной воды. Как правило, анестезатор нужно добавлять в сосуд с животными небольшими порциями, но иногда положительный результат достигается путем быстрого увеличения его концентрации. В каждом конкретном случае способ обездвиживания подбирают экспериментально. Весь процесс длится от нескольких минут до нескольких часов и заканчивается, когда животное перестает реагировать на уколы иглой. Анестезированные экземпляры фиксируются обычным путем.

47

Приложение 4

Способы фиксации и анестезии морских беспозвоночных

48

СОДЕРЖАНИЕ

ВВЕДЕНИЕ………………………………………………………………………. 3

ПРОСТЕЙШИЕ или ОДНОКЛЕТОЧНЫЕ (PROTOZOA)……………………. 5

НИЗШИЕ МНОГОКЛЕТОЧНЫЕ………………………………………………. 19

Тип Placozoa………………………………………………………………… 19

Тип Porifera или Spongia…………………………………………………… 20

ВЫСШИЕ МНОГОКЛЕТОЧНЫЕ (EUMETAZOA)…………………………… 22

РАЗДЕЛ ЛУЧИСТЫЕ…………………………………………………………… 22

Тип Coelenterata или Сnidaria……………………………………………… 22

Тип Ctenophora……………………………………………………………… 31

ТЕСТОВЫЕ МАТЕРИАЛЫ ДЛЯ САМОКОНТРОЛЯ………………………… 34

ИСПОЛЬЗОВАННАЯ И РЕКОМЕНДУЕМАЯ ЛИТЕРАТУРА……………… 42

ПРИЛОЖЕНИЯ…………………………………………………………………… 44

49